ข้อมูล

10.3: คำถามก่อนการทดลอง - ชีววิทยา

10.3: คำถามก่อนการทดลอง - ชีววิทยา


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

  1. “การเจือจางแบบอนุกรม” หมายถึงอะไร?
  2. เหตุใดจึงต้องทราบจำนวนแบคทีเรียในตัวอย่างอาหารหรือเครื่องดื่ม
  3. เขียนสิ่งต่อไปนี้ในสัญกรณ์วิทยาศาสตร์:
    1. 1:10
    2. 1:10,000
    3. 234 x 104
  4. ค่าผกผันของ 3.0 x 10-5 คืออะไร?
  5. วิธีใดที่อาจประเมินจำนวนเซลล์ในตัวอย่างมากเกินไป
    1. การนับโดยตรง
    2. การนับแผ่นมาตรฐาน - วิธีการแยกแผ่นกระจาย

การนับโดยตรง

จุลินทรีย์ในตัวอย่างสามารถนับได้โดยการดูและนับผ่านกล้องจุลทรรศน์และใช้สไลด์พิเศษที่เรียกว่าห้องนับ Petroff-Hausser สามารถนับเซลล์เม็ดเลือดด้วยวิธีนี้ผ่านทางฮีโมไซโตมิเตอร์ (ดูหัวข้อทรัพยากร) ปริมาตรตัวอย่างที่ทราบจะวางอยู่บนสไลด์ และสไลด์มีเส้นตารางการทำเครื่องหมายพื้นที่ของปริมาตรที่ทราบ พื้นที่ที่ทำเครื่องหมายสามารถประเมินได้ในรูปแบบเฉพาะ เซลล์จะถูกนับในแต่ละพื้นที่ จึงสามารถคำนวณจำนวนรวมของตัวอย่างได้

ย้อนกลับไปในอดีต ฉันทำงานให้กับบริษัทน้ำผลไม้แห่งหนึ่งใน QC หนึ่งในการทดสอบของ OJ คือการนับสารปนเปื้อนจากเชื้อราและแมลงผ่านสไลด์ Petroff-Hausser

ศ.เคลลี่ เบิร์ก

ตัวนับเซลล์อิเล็กทรอนิกส์ยังนับแต่ละเซลล์ โดยทั่วไปเมื่อเซลล์เหล่านั้นไหลผ่านเลเซอร์ (flow cytometry) ทั้งสองวิธีนี้นับทั้งเซลล์ที่มีชีวิตและเซลล์ที่ตายแล้ว และอาจมีเศษซากในสารละลาย คุณจะไม่ทำการนับโดยตรงในแล็บนี้

จำนวนจานมาตรฐาน

วิธีการแยกแผ่นกระจาย

ใน SPC ต้องการกำหนดความหนาแน่น (จำนวน) ของแบคทีเรียในตัวอย่างน้ำซุป/ตัวอย่างแบคทีเรียที่ไม่ทราบความหนาแน่น (จำนวนเซลล์/ปริมาตรต่อหน่วย) อาจมีตัวอย่างเล็กๆ น้อยๆ จากตัวอย่าง ซึ่งอาจจะเป็น 1.0 มล. หรือ 0.1 มล. แล้วเกลี่ยให้ทั่วจานเพาะเชื้อเพื่อนับจำนวนโคโลนีที่เป็นผล (โปรดจำไว้ว่าแต่ละอาณานิคมมาจากเซลล์หรือหน่วยของแบคทีเรียหนึ่งเซลล์) อย่างไรก็ตาม ตัวอย่างส่วนใหญ่ โดยพิจารณาจากความขุ่น อาจมีแบคทีเรียนับล้านต่อมิลลิลิตรในตัวอย่าง ถ้า 1.0ml ถูกชุบบนวุ้น จำนวนของแบคทีเรียจะมากจนไม่สามารถนับหรือแยกแยะแต่ละอาณานิคมได้ ดังนั้น เราต้องทำการเจือจางเป็นชุดกับตัวอย่างเพื่อให้ได้ตัวอย่างที่จะสร้างจานที่สามารถนับโคโลนีได้

ในการทำเช่นนี้ ปริมาตรที่ทราบจะถูกนำมาจากตัวอย่างเดิมและวางไว้ในหลอดเจือจางของปริมาตรที่ทราบ ซึ่งปกติจะเป็นน้ำปลอดเชื้อหรือน้ำซุป หลังจากผสม ปริมาตรที่ทราบจากหลอดเจือจางจะถูกนำและวางในหลอดเจือจางอื่น ชุดของการเจือจางนี้สามารถทำซ้ำได้หลายครั้ง ส่งผลให้เซลล์ในแต่ละหลอดลดลงเรื่อยๆ

จากของผสมที่เจือจางแล้ว สามารถนำ 1.0 มล. หรือ 0.1 มล. ออกแล้วเกลี่ยให้ทั่วจาน ที่ไหนสักแห่งในซีรีส์นี้จะเป็น "จานที่นับได้" จานที่นับได้คือจานที่มีระหว่าง 30-300 CFU/มล. (olony NSออร์มิง ยูนิต/มล.) อาณานิคมน้อยกว่า 30 (TFTC) และการนับผิดบนจานกลายเป็นปัญหาทางสถิติ อาณานิคมมากกว่า 300 (TNTC) และการนับกลายเป็นเรื่องยากมากและเกิดข้อผิดพลาดได้ง่าย! คุณจะเห็นสิ่งนี้เมื่อคุณใส่ตัวอย่างของคุณ

เมื่อนับจำนวน CFU บนจานแล้ว จะต้องคูณจำนวนนั้นกลับด้วยปริมาณตัวอย่างที่เจือจาง—ปัจจัยการเจือจาง ตัวอย่างเช่น หากคุณเจือจางตัวอย่างของคุณ 100 เท่า (หมายความว่าตัวอย่างที่คุณใช้เจือจางมากกว่าตัวอย่างเดิม 100 เท่า) คุณต้องคูณจำนวนของคุณด้วย 100 เพื่อกำหนดความหนาแน่นของแบคทีเรียในตัวอย่างดั้งเดิม มีหลายวิธีในการคำนวณการเจือจางในซีรีส์และการเจือจางสุดท้ายที่เคลือบ เจือจางชนิดใดก็ได้ อย่างไรก็ตาม ใน SPC การเจือจางโดยทั่วไปจะอยู่ที่ 1:10 หรือ 1:100 ซึ่งจะกลายเป็นเรื่องง่ายในการคำนวณเมื่อคุณฝึกฝนและรับรูปแบบ กระบวนการนี้แสดงให้เห็นในตัวอย่างด้านล่าง

ตัวอย่าง (PageIndex{1})

การเจือจางครั้งเดียวสามารถหาได้ดังนี้:

ปริมาณที่ถ่ายโอน + ปริมาตรของหลอดเจือจาง = DF (ปัจจัยการเจือจาง)

หาก 1.0 มล. ถูกถ่ายโอนไปยังหลอดเจือจาง 9.0 มล. การเจือจางจะเป็น:

การเจือจางจะเป็นอย่างไรหากเติม 0.1 มล. ลงใน 9.9 มล. แสดงว่าคุณจะกำหนดสิ่งนี้อย่างไร

สารละลาย

ชุดของการเจือจางเป็นแบบสะสม แต่ละหลอดมีความเจือจางมากกว่าหลอดสุดท้าย ดังนั้นการเจือจางจึงถูกนำมาผสม (คูณเข้าด้วยกัน) เมื่ออนุกรมดำเนินไป:

การเจือจางเหล่านี้สามารถคำนวณได้ด้วยสมการที่ใช้กันทั่วไปดังนี้:

[V_1D_1 = V_2D_2 ไม่ใช่หมายเลข ]

โดยที่ V= ปริมาณ; D= การเจือจาง

สมมติว่าคุณถ่ายโอน 10.0 มล. จากตัวอย่างที่ไม่เจือปนเดิมของคุณไปยังหลอดเจือจาง 90.0 มล. (V_1) คือปริมาณที่คุณจะโอน (10.0ml) (D_1) เป็น 1 เสมอ เพราะนั่นคือหลอดเจือจางเริ่มต้น (V_2) คือปริมาตรทั้งหมดในหลอดเจือจางถัดไปเมื่อคุณถ่ายโอนตัวอย่างของคุณไป ดังนั้นในกรณีนี้

][เริ่มต้น{จัดตำแหน่ง*}
10.0mathi{ml} (1) &= 100.0mathi{ml} (D_2); ext {แก้สำหรับ } D_2
10.0mathi{ml}/100.0mathi{ml}&= D_2
1/10&= D_2 ข้อความ { หรือ}
10^{-1}& = D_2
end{align*} ไม่ใช่หมายเลข ]

นี่เป็นตัวอย่างที่ผิดปกติมากกว่า โอน 3.0 มล. ลงในหลอดเจือจางด้วย 10.0 มล. (ทำไม? เพราะใครก็ได้! ไม่ใช่ว่าปกติจะ…)

][เริ่มต้น{จัดตำแหน่ง*}
3.0mathi{ml} (1) &= 10.0mathi{ml} (D_2); ext {แก้สำหรับ } D_2
3.0math{ml}/13.0mathi{ml}&= D_2
0.23&= D_2 ข้อความ { หรือ}
2.3ครั้ง 10^{-1}& = D_2
end{align*} ไม่ใช่หมายเลข ]

ขั้นตอนต่อไปคือการใส่ตัวอย่างของคุณ อีกครั้ง โดยปกติคุณจะต้องใส่ 1.0ml หรือ 0.1ml ขึ้นอยู่กับสิ่งที่คุณต้องการสำหรับการเจือจางขั้นสุดท้ายของคุณ แสดง Dilution Factor (DF) สำหรับแต่ละเพลต (ค่าการเจือจางขั้นสุดท้ายสำหรับเพลต):

เพื่อกำหนดจำนวน (ความหนาแน่นของเซลล์ดั้งเดิม) ของแบคทีเรียในตัวอย่างดั้งเดิม:

จำนวน CFU:

OCD= จำนวนชุบ x ปัจจัยการเจือจาง

หากคุณเจือจางจาน 100x (1:100 หรือ (10^{-2})) ให้โอน 1.0 มล. ไปยังจานวุ้นซึ่งส่งผลให้มีอาณานิคม 65 บนจาน:

65 คือจำนวน CFU

1.0 มล. คือปริมาณที่ชุบ

(10^{-2}) คือปัจจัยการเจือจาง

ดังนั้น,

65 CFU

(1.0mathi{ml}lx 10^{-2} = 65 x 10^2 ext{CFU}/mathi{ml} = 6.5 x 10^3 ext{CFU}/mathi{ml} = ) ความหนาแน่นของแบคทีเรียในตัวอย่างเดิมของคุณ


ตัวอย่างห้องปฏิบัติการออสโมซิส 2

บทนำ:
พลังงานจลน์ ซึ่งเป็นแหล่งพลังงานที่สะสมอยู่ในเซลล์ ทำให้โมเลกุลชนกันและเคลื่อนที่ไปในทิศทางใหม่ การแพร่กระจายเป็นผลมาจากการติดต่อนี้ การแพร่กระจายคือการเคลื่อนที่แบบสุ่มของโมเลกุลไปยังบริเวณที่มีความเข้มข้นต่ำกว่าจากบริเวณที่มีความเข้มข้นสูงกว่า ออสโมซิสเป็นประเภทของการแพร่กระจาย นี่คือการแพร่กระจายของน้ำผ่านเยื่อบางๆ ที่ซึมผ่านได้จากบริเวณที่มีศักยภาพน้ำสูงไปยังบริเวณที่มีศักยภาพน้ำต่ำ ศักยภาพของน้ำคือการวัดพลังงานอิสระของน้ำในสารละลาย ระบบที่มีชีวิตยังมีการเคลื่อนย้ายเชิงรุกเพื่อสร้างการเคลื่อนที่ของอนุภาคเช่นไอออนที่เคลื่อนที่ต้านการไล่ระดับความเข้มข้นของพวกมัน ในระหว่างกระบวนการนี้จะใช้แหล่งพลังงาน ATP เพื่อเคลื่อนอนุภาคข้ามเยื่อหุ้มเซลล์ การทดลองนี้ใช้การวัดการแพร่กระจายของโมเลกุลขนาดเล็กผ่านท่อฟอกไต ท่อนี้ทำหน้าที่เป็นเมมเบรนที่ซึมผ่านได้เฉพาะส่วน ทำให้โมเลกุลขนาดใหญ่สามารถผ่านเข้าไปได้ แต่ช้า การฟอกไตคือการเคลื่อนที่ของตัวถูกละลายผ่านเมมเบรนที่ดูดซึมได้

เมื่อสารละลายทั้งสองที่ด้านใดด้านหนึ่งของเมมเบรนเท่ากันและตรวจไม่พบการเคลื่อนที่ของตาข่าย สารละลายจะเป็นไอโซโทนิก ซึ่งหมายความว่าสารละลายมีความเข้มข้นของตัวถูกละลายเท่ากัน หากสารละลายสองชนิดมีความเข้มข้นของตัวถูกละลายต่างกัน สารละลายที่มีตัวถูกละลายมากกว่าจะเป็นแบบไฮเปอร์โทนิก สารละลายที่มีตัวถูกละลายน้อยกว่าคือไฮโปโทนิก

ศักยภาพของน้ำเป็นตัวทำนายการเคลื่อนที่ของน้ำเข้าหรือออกจากเซลล์พืช ตัวย่อมาจากอักษรกรีก psi และมีองค์ประกอบสองอย่างคือองค์ประกอบความดันทางกายภาพ ศักย์แรงดัน และผลกระทบของตัวถูกละลาย ศักยภาพของตัวถูกละลาย น้ำจะเคลื่อนจากบริเวณที่มีศักย์น้ำสูงไปต่ำเสมอ สมการคือศักย์น้ำเท่ากับผลรวมของศักย์แรงดันและศักย์ตัวละลาย

ในเซลล์พืช จำเป็นต้องมีแรงดัน turgor นี่เป็นแรงกดดันสำหรับพืชในสภาพแวดล้อมที่ไม่สมดุล แรงดัน Turgor ทำให้พืชมีโครงสร้างและแข็งแรง เมื่อเซลล์พืชอยู่ในสารละลายไอโซโทนิก แรงดัน turgor จะลดลง ทำให้โครงสร้างพืชเหี่ยวแห้ง ในสารละลายไฮเปอร์โทนิก เมมเบรนในพลาสมาของพืชจะหดตัวออกจากผนังเซลล์ ซึ่งเป็นการกระทำที่เรียกว่าพลาสโมไลซิส

สมมติฐาน:
การแพร่กระจายและออสโมซิสเกิดขึ้นระหว่างสารละลายของฟันกรามต่างๆ จนกระทั่งสารละลายมีไอโซโทนิก ส่งผลต่อแรงดัน turgor ของเซลล์พืช

วัสดุ:
Lab 1A – วัสดุที่ใช้ในการทดลองนี้มีดังนี้ ท่อฟอกไตขนาด 30 ซม. 1 เส้น (แช่ไว้ล่วงหน้า) น้ำกลั่น กลูโคส 15% สารละลายแป้ง 1% บีกเกอร์ 250 มล. สารละลายไอโอดีนโพแทสเซียมไอโอไดด์ กลูโคสเทสเทป และสตริง

แล็บ 1B – วัสดุที่ใช้ในการทดลองนี้มีดังนี้: ท่อฟอกไตสำเร็จรูปหกเส้น, น้ำกลั่น, 0.2M, 0.4M, 0.6M, 0.8M และ 1.0M ของซูโครส, บีกเกอร์แก้ว 250mL หกเส้น, สตริงและ ความสมดุลทางอิเล็กทรอนิกส์

แล็บ 1C – วัสดุที่ใช้ในการทดลองนี้มีดังนี้: บีกเกอร์แก้ว 250 มล. หกชิ้น, มันฝรั่ง, สว่านเจาะแกน, มีด, น้ำกลั่น, สารละลายซูโครส 0.2M, 0.4M, 0.6M, 0.8M และ 1.0M ของซูโครส เครื่องสาย ไม้บรรทัด และเครื่องชั่งอิเล็กทรอนิกส์

แล็บ 1D – วัสดุที่ใช้ทำการทดลองมีดังนี้ กระดาษกราฟ ดินสอ ไม้บรรทัด เครื่องคิดเลข และดินสอสี

แล็บ 1E วัสดุที่ใช้ในการทดลองมีดังนี้ กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง สไลด์ไมโครสโคป ฝาครอบสลิป น้ำกลั่น สารละลาย NaCl กระดาษ ดินสอ และผิวหัวหอม

ขั้นตอน:
ห้องทดลอง 1A: นำท่อไตขนาด 30 ซม. ที่แช่ไว้ในน้ำกลั่นแล้ว มัดปลายด้านหนึ่งอย่างแน่นหนา เปิดปลายอีกด้านของหลอดฟอกไตและใส่ 15 มล. ของกลูโคส 15%/สารละลายแป้ง 1% มัดปลายอีกด้านของกระเป๋าไว้ ปล่อยให้มีที่สำหรับขยาย บันทึกสีของสารละลายลงในถุง ทดสอบสารละลายน้ำตาลกลูโคส 15%/แป้ง 1% สำหรับการมีอยู่ของกลูโคสโดยใช้ Testape เติมบีกเกอร์ 250 มล. ด้วยน้ำกลั่นและเติมสารละลาย Lugol (IKI) ประมาณ 4 มล. ลงในน้ำกลั่น ทดสอบสารละลายนี้เพื่อดูว่ามีกลูโคสอยู่หรือไม่ด้วย Testape บันทึกผลลัพธ์ลงในตารางข้อมูล จุ่มถุงลงในบีกเกอร์ของสารละลาย ปล่อยทิ้งไว้ประมาณ 30 นาที หรือจนกว่าจะสังเกตเห็นสีที่เด่นชัด บันทึกสีสุดท้ายของสารละลายลงในถุงและในบีกเกอร์ ทดสอบสารละลายทั้งสองอีกครั้งเพื่อดูว่ามีน้ำตาลกลูโคสด้วยแถบ Testape หรือไม่

แล็บ 1B: ก่อนเริ่มแล็บนี้ ล้างมือให้สะอาด เตรียมแผ่นฟอกไตขนาด 30 ซม. จำนวน 6 แผ่นที่แช่ในน้ำกลั่น มัดปลายแต่ละด้านอย่างแน่นหนา เทสารละลายน้ำตาลซูโครสแต่ละชนิดประมาณ 25 มล. ลงในถุงตามลำดับ (ซึ่งควรติดฉลากไว้ แต่ไม่ใช่บนตัวหลอด) มัดปลายอีกด้านอย่างแน่นหนาด้วยเชือก ระวังไม่ให้ฟองอากาศออกและปล่อยให้มีที่ว่างสำหรับการขยายตัว ล้างถุงแต่ละใบแล้วซับน้ำออก ชั่งน้ำหนักและบันทึกมวลเริ่มต้นของถุงฟอกไตในตารางข้อมูล เติมบีกเกอร์แก้ว 250 มล. 2/3 หกใบที่เต็มไปด้วยน้ำกลั่น และติดฉลากบีกเกอร์แต่ละอันด้วยโมลาริตีของซูโครสในถุงตามลำดับ จุ่มแต่ละถุงลงในน้ำกลั่น ปล่อยให้มันยืนเป็นเวลาสามสิบนาที นำถุงแต่ละใบออก ซับด้านข้างเพื่อเอาสารละลายพิเศษออก แล้วชั่งน้ำหนักและบันทึกมวลเป็นกรัมในแต่ละถุง แล้วระบุความแตกต่างของมวลและเปอร์เซ็นต์การเปลี่ยนแปลงของมวล ถัดไป เปรียบเทียบเปอร์เซ็นต์ของกลุ่มกับชั้นเรียน

แล็บ 1C: เทสารละลายซูโครสที่กำหนด 100 มล. ลงในบีกเกอร์ 250 มล. (ติดฉลากไว้ล่วงหน้า) รับมันฝรั่งขนาดใหญ่ ใช้ตัวเจาะแกนนำมันฝรั่ง 24 ตัวอย่างออกมาแล้ววัดแต่ละหน่วยเป็นเซนติเมตรเพื่อให้มีความยาวเท่ากัน (ใช้มีดปาดปลาย) ตรวจสอบให้แน่ใจว่าไม่ได้ทิ้งผิวหนังไว้กับตัวอย่าง วางแกนเหล่านี้ไว้ในบีกเกอร์ที่มีฝาปิดจนกว่าจะได้เครื่องชั่งอิเล็กทรอนิกส์ กำหนดมวลของแกนสี่ตัวในแต่ละครั้ง โดยใส่สี่แกนลงในสารละลายซูโครส บันทึกข้อมูลนี้สำหรับบีกเกอร์ทั้งหกชิ้น ปล่อยให้ตัวอย่างมันฝรั่งแช่ในสารละลายข้ามคืน นำแกนออก ลบสารละลายส่วนเกินออก และชั่งน้ำหนักตัวอย่าง บันทึกมวลในตารางข้อมูล กำหนดความแตกต่างของมวล เปอร์เซ็นต์การเปลี่ยนแปลงของมวล และเปอร์เซ็นต์การเปลี่ยนแปลงของมวลเฉลี่ยของชั้นเรียน กราฟการเพิ่มขึ้นและลดลงของมวลของแกนมันฝรั่งตามโมลาริตีของสารละลายที่วางไว้ในกราฟ 1.2

แล็บ 1D: การใช้กระดาษ ดินสอ และเครื่องคิดเลขกำหนดศักย์ตัวถูกละลายของสารละลายซูโครส ศักย์แรงดัน และศักย์ของน้ำ รับกระดาษกราฟและกราฟค่าที่กำหนดสำหรับการเปลี่ยนแปลงเปอร์เซ็นต์ของบวบในมวลและโมลาริตีของสารละลายซูโครสในกราฟ 1.3

แล็บ 1E: เตรียมสไลด์ภูเขาหอมเปียกเปียก สังเกตด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงและร่างสิ่งที่คุณเห็น เพิ่มสารละลาย NaCl สองสามหยด สังเกต และร่างสิ่งที่คุณเห็นด้วยเช่นกัน

ข้อมูล:
ตารางที่ 1.1 การมีอยู่ของกลูโคสในสารละลายบีกเกอร์และถุง


10.3: คำถามก่อนการทดลอง - ชีววิทยา

นักเรียนหลายคนที่เพิ่งเริ่มต้นการศึกษาวิทยาศาสตร์อาจไม่คุ้นเคยกับแนวคิดของบทคัดย่อในรายงานของห้องปฏิบัติการ ซึ่งมักไม่จำเป็นต้องใช้ในหลักสูตรวิทยาศาสตร์เบื้องต้นเนื่องจากระดับความยาก เมื่อเรียนในชั้นเรียนที่สูงกว่า ครูจะระบุว่าต้องการรวมบทคัดย่อในรายงานที่เป็นลายลักษณ์อักษรหรือไม่ หากจำเป็น ให้เป็นส่วนแรกของรายงานของคุณ ตามหน้าชื่อเรื่องโดยตรงและดำเนินการแนะนำต่อ

บทคัดย่อ แม้ว่าจะมาก่อนในเชิงตรรกะ แต่ควรเขียนไว้หลังสุดเสมอ จำเป็นต้องเขียนเป็นลำดับสุดท้าย เนื่องจากเป็นสาระสำคัญของรายงานของคุณ โดยดึงข้อมูลจากส่วนอื่นๆ ทั้งหมดของรายงาน อธิบายว่าทำไมจึงทำการทดลองและได้ข้อสรุปอะไรจากผลลัพธ์ที่ได้ แนวปฏิบัติทั่วไปสำหรับบทคัดย่อประกอบด้วยห้าส่วนหรือประเด็นสำคัญ: เหตุใดจึงทำการทดลอง ปัญหาที่เกิดขึ้นโดยใช้วิธีการใดในการแก้ปัญหา ผลลัพธ์หลักที่ได้รับและข้อสรุปโดยรวมจากการทดลองโดยรวม อย่างไรก็ตาม อย่าหลงผิดจากรายการนี้ให้คิดว่าบทคัดย่อเป็นส่วนที่ยาว อันที่จริง มันควรจะสั้นกว่าอย่างอื่นทั้งหมดอย่างมีนัยสำคัญ ข้อมูลทั้งหมดนี้ควรได้รับการสรุปในลักษณะที่ชัดเจนแต่กระชับหากบทคัดย่อจะประสบความสำเร็จ ความยาวเฉลี่ยโดยประมาณสำหรับข้อมูลทั้งหมดนี้เป็นเพียงย่อหน้าเดียว แม้ว่าข้อมูลดังกล่าวอาจดูเหมือนมีความยาวสั้น ๆ ในการเก็บข้อมูลที่จำเป็นทั้งหมด แต่ก็จำเป็นเพราะจะทำให้คุณต้องมีคุณสมบัติที่จำเป็นสองประการที่ถูกต้องและกระชับ

วิธีที่ดีที่สุดในการพยายามเขียนบทคัดย่อคือแบ่งออกเป็นส่วนต่างๆ ที่กล่าวถึงข้างต้น สองส่วนแรกมีความคล้ายคลึงกันมากและสามารถจัดกลุ่มเข้าด้วยกันได้ แต่ไม่จำเป็นต้องเป็นอย่างนั้น หากคุณตัดสินใจที่จะพูดถึงพวกเขาแยกกัน ตรวจสอบให้แน่ใจว่าคุณไม่ได้พูดอะไรซ้ำ บ่อยครั้งสามารถกล่าวถึงส่วนได้เพียงประโยคเดียว โปรดจำไว้ว่า ความกะทัดรัดเป็นกุญแจสู่ความสำเร็จที่เป็นนามธรรม แต่ละส่วนมีการระบุไว้ด้านล่างเพื่อช่วยชี้แจงสิ่งที่จำเป็นต้องรวมและสิ่งที่สามารถละเว้นได้

สิ่งสำคัญที่สุดที่ต้องจดจำเมื่อเขียนบทคัดย่อคือการกระชับและระบุเฉพาะสิ่งที่เกี่ยวข้องเท่านั้น ไม่ควรรวมข้อมูลภายนอก บทคัดย่อที่ประสบความสำเร็จนั้นกะทัดรัด แม่นยำ และครบถ้วนในตัวเอง นอกจากนี้ยังต้องมีความชัดเจนเพียงพอเพื่อให้ผู้ที่ไม่คุ้นเคยกับการทดสอบของคุณสามารถเข้าใจได้ว่าทำไมคุณถึงทำในสิ่งที่คุณทำ และสิ่งที่การทดลองระบุไว้ในตอนท้าย ข้อสังเกตเพิ่มเติมคือ บทคัดย่อมักเขียนด้วย passive voice แต่สามารถใช้สรรพนามส่วนตัว เช่น I หรือ we ได้

คำถามทั่วไปที่จะกล่าวถึงในส่วนบทคัดย่อ

1. เหตุใดจึงเสร็จสิ้นและปัญหาที่กำลังแก้ไขคืออะไร?
ทั้งสองส่วนนี้สามารถจัดกลุ่มเป็นข้อความสั้นๆ ได้เพียงประโยคเดียว โดยสรุปว่าเหตุใดจึงทำการทดลองตั้งแต่แรก คำถามที่พยายามจะตอบคืออะไร? วิทยาศาสตร์คือการสำรวจความจริง มันเป็นเรื่องของความอยากรู้และการตอบคำถามเพื่อค้นหาสาเหตุและวิธีการทำงานของสิ่งต่างๆ วิธีการทางวิทยาศาสตร์เป็นตัวอย่างที่ชัดเจนของการระบุปัญหาหรือคำถามก่อนแล้วจึงพยายามหาคำตอบ ส่วนนี้เป็นคำชี้แจงของปัญหาเดิม นั่นเป็นเหตุผลที่ว่าทำไมการทดลองจึงเกิดขึ้น สิ่งนี้ไม่ควรมีรายละเอียดมากมาย แต่ควรเป็นคำสั่งง่ายๆ มันสามารถระบุได้มากสุดหนึ่งหรือสองประโยค

2. คุณทำอะไร?
บทคัดย่อส่วนนี้ระบุถึงสิ่งที่ทำเพื่อพยายามตอบคำถามที่เสนอ ไม่ควรมีรายละเอียดมาก ประกอบด้วยโครงร่างสั้น ๆ ของสิ่งที่ทำเสร็จแล้ว โดยเน้นเฉพาะขั้นตอนที่สำคัญเท่านั้น เป็นหัวข้อวัสดุและวิธีการในบทคัดย่อของคุณ แต่มีความยาวเพียงหนึ่งหรือสองประโยคเท่านั้น เป็นคำอธิบายว่าคุณตัดสินใจแก้ปัญหาอย่างไร

3. คุณค้นพบอะไร?
กล่าวอีกนัยหนึ่งว่าการทำงานหนักและการเตรียมตัวของคุณบอกอะไรเกี่ยวกับคำถามที่คุณตั้งเป้าจะตอบ ข้อมูลนี้มีเฉพาะผลลัพธ์ที่สำคัญที่ได้รับเท่านั้น ผลลัพธ์ที่สำคัญคือสิ่งที่จำเป็นต่อการตอบคำถามเดิมของคุณ หากไม่มีผลลัพธ์เหล่านี้ การทดลองก็จะไร้ประโยชน์ ผลลัพธ์ควรระบุไว้สั้น ๆ และไม่ควรอธิบาย แต่ควรกล่าวถึงเท่านั้น คล้ายกับส่วนผลลัพธ์ของบทความของคุณมาก แต่เน้นเฉพาะผลลัพธ์ที่เกี่ยวข้องซึ่งใช้ในการสรุปผล ความยาวเฉลี่ยสำหรับส่วนนี้คือไม่เกินสองหรือสามประโยค อย่างไรก็ตาม ตัวเลขนี้สามารถเปลี่ยนแปลงได้ ขึ้นอยู่กับความซับซ้อนของการทดสอบ ดังนั้นเส้นบอกแนวความยาวเหล่านี้จึงเป็นเพียงแนวทางเท่านั้น ไม่ใช่แนวทาง ไม่ใช่กฎ

4. บทสรุป?
นี่คือจุดสิ้นสุดของบทคัดย่อของคุณ ซึ่งขึ้นอยู่กับผลลัพธ์ที่ได้รับโดยตรง นี่คือส่วน "so อะไร" ของการทดสอบของคุณ "ดังนั้นอะไร" หมายถึงผลลัพธ์ที่มีความหมายในระยะยาว คุณไม่จำเป็นต้องระบุวิธีการสรุปของคุณ เพียงแต่เป็นข้อสรุปสุดท้ายเท่านั้น สิ่งนี้ควรเป็นไปตามผลลัพธ์โดยตรงเพื่อให้ผู้อ่านรู้ว่าผลลัพธ์ใดนำไปสู่ข้อสรุปใด นี่เทียบเท่ากับส่วนอภิปรายของบทความ แต่อีกครั้ง เช่นเดียวกับบทคัดย่อที่เหลือ จำเป็นต้องระบุให้สั้นและกระชับอีกครั้ง คุณไม่จำเป็นต้องอธิบายว่าคุณอนุมานข้อสรุปจากผลลัพธ์ที่ได้รับได้อย่างไร มีเพียงข้อสรุปสุดท้ายเท่านั้น หลังจากที่คุณระบุสิ่งนี้แล้ว บทคัดย่อก็เสร็จสมบูรณ์

ต่อไปนี้เป็นตัวอย่างสองตัวอย่างที่เป็นนามธรรมเดียวกัน ตัวอย่างที่หนึ่งคือตัวอย่างของบทคัดย่อที่เขียนไม่ดี ในขณะที่ตัวอย่างที่สองคือตัวอย่างของบทคัดย่อที่เขียนได้ดี คำที่เป็นตัวเอียงคือลิงก์ไปยังคำอธิบายที่อธิบายว่าเหตุใดประโยคจึงเป็นตัวอย่างที่ดีหรือไม่ดีของบทคัดย่อ

ตัวอย่างที่ 1 : การทดลองนี้จะกำหนดว่าอะไรจะทำให้เอ็นไซม์มีประสิทธิภาพและอะไรจะทำให้เอ็นไซม์ไม่ได้ผล เราทดสอบตัวอย่างเอนไซม์ต่างๆ ในเครื่องสเปกโตรโฟโตมิเตอร์และบันทึกอัตราการดูดซึมของเอนไซม์ ตัวอย่างหกตัวถูกวางลงในสเปกโตรโฟโตมิเตอร์ แต่สองตัวอย่างไม่มีเอ็นไซม์ซึ่งทำหน้าที่เป็นช่องว่างสำหรับตัวอย่างอื่นๆ ตัวอย่างที่เหลือสี่ตัวอย่างมี Catecholase ตั้งแต่ 0.5 มล. ถึง 1.75 ม. ในช่วงครึ่งหลังของการทดลองมีหลอดทดลองสี่หลอดที่มีปริมาณ Catecolase คงที่ แต่ระดับ pH อยู่ระหว่างสี่ถึงแปด พบว่าหากมีเอนไซม์ในปริมาณมาก อัตราการดูดซึมก็จะสูง และหากระดับ pH อยู่ระหว่าง 6 ถึง 8 อัตราการดูดซึมก็จะสูง ดังนั้นจึงอาจกล่าวได้ว่าเอนไซม์ทำงานได้ดีในระดับ pH ที่เป็นกลางและในปริมาณมาก

ตัวอย่างที่ 2 : การทดลองนี้ดำเนินการเพื่อหาปัจจัยที่ส่งผลในเชิงบวกต่ออัตราการเกิดปฏิกิริยาของเอนไซม์ในกิจกรรมของเซลล์ เนื่องจากเอนไซม์บางตัวดูเหมือนจะมีประสิทธิภาพมากกว่าตัวอื่นๆ กิจกรรมของเอนไซม์คาเทโคลเลสถูกวัดผ่านอัตราการดูดซึมในสเปกโตรโฟโตมิเตอร์ โดยใช้แสงที่มีความยาวคลื่น 540 นาโนเมตร เราเปรียบเทียบอัตราการดูดกลืนแสงในตัวอย่างที่มีความเข้มข้นของเอนไซม์ที่แตกต่างกันและ pH คงที่ที่ 7 และกับตัวอย่างที่มีความเข้มข้นของเอนไซม์คงที่และระดับ pH ที่แตกต่างกัน ตัวอย่างที่มีความเข้มข้นของเอนไซม์สูงสุดมีอัตราการดูดซึมสูงสุด 95 เปอร์เซ็นต์ เมื่อเทียบกับตัวอย่างที่มีความเข้มข้นต่ำสุดและมีอัตราการดูดซึม 24 เปอร์เซ็นต์ นี่แสดงให้เห็นว่าความเข้มข้นของเอนไซม์ที่สูงขึ้นจะทำให้อัตราการผลิตผลิตภัณฑ์สูงขึ้น ตัวอย่างที่มีค่า pH อยู่ระหว่าง 6 ถึง 8 มีอัตราการดูดซึมสูงสุดที่ 70 เปอร์เซ็นต์ เมื่อเทียบกับอัตราการดูดซึม 15 เปอร์เซ็นต์โดยมีค่า pH เท่ากับ 4 ซึ่งแสดงให้เห็นว่า Catecolase มีประสิทธิภาพมากที่สุดใน pH เป็นกลางตั้งแต่ 6 ถึง 8

คำอธิบายของลิงค์ตัวอย่าง

ไม่ได้ผล : ประโยคนี้อยู่ในกาลปัจจุบันและจำเป็นต้องเปลี่ยนเป็นกาลที่ผ่านมา นอกจากปัญหาที่ตึงเครียดแล้ว ประโยคนี้ไม่ได้บอกผู้อ่านมากนักเกี่ยวกับความหมายของคำที่มีประสิทธิภาพ เอนไซม์ที่มีประสิทธิภาพคืออะไรกันแน่? ผู้เขียนต้องมีความเฉพาะเจาะจงและพยายามหลีกเลี่ยงคำทั่วไปเช่นมีผลบังคับใช้ นอกจากนี้ ผู้เขียนไม่เคยระบุว่าเหตุใดจึงทำการทดลอง เหตุใดประสิทธิภาพของเอนไซม์จึงมีความสำคัญมาก? อะไรทำให้มีความสำคัญพอที่จะศึกษา? (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 1)

ราคา : ประโยคนี้กล่าวถึงสิ่งที่ทำไปแล้ว แต่แทบจะไม่สามารถสื่อถึงข้อมูลใดๆ ได้เลย ผู้เขียนระบุว่ามีการทดสอบตัวอย่างเอนไซม์ต่างๆ แต่ไม่ได้กล่าวถึงเนื้อหาของตัวอย่าง ใช้เอนไซม์ตัวเดียวกันในทุกตัวอย่างหรือไม่? อะไรอยู่ในแต่ละตัวอย่าง และอะไรที่แตกต่างกันในแต่ละตัวอย่าง? นอกจากนี้การดูดซึมเกี่ยวข้องกับกิจกรรมของเอนไซม์อย่างไร? ความสัมพันธ์นี้จะต้องอธิบายให้ผู้อ่านเข้าใจ รายละเอียดสุดท้ายที่ควรรวมไว้คือความยาวคลื่นของแสงที่ใช้ในสเปกโตรโฟโตมิเตอร์ มันคงที่หรือเป็นตัวแปรด้วย? (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 1)

แปด : ยาวเกินไปและมีรายละเอียดมากเกินกว่าจะเป็นนามธรรมได้ ฟังดูราวกับว่าดึงมาจากส่วนวิธีการและวัสดุของกระดาษ ไม่จำเป็นต้องระบุปริมาณของเอนไซม์หรือระดับ pH ไม่จำเป็นต้องรวมจำนวนตัวอย่างที่ทดสอบ เพราะเป็นเพียงข้อมูลภายนอกที่ไม่สำคัญต่อการทำความเข้าใจการทดลองโดยรวม ข้อมูลที่อยู่ในประโยคนี้สามารถดึงออกมาและจัดเรียงใหม่เพื่อบอกว่าตัวอย่างบางตัวมีค่า pH คงที่และความเข้มข้นของเอนไซม์ที่แตกต่างกัน และตัวอย่างอื่นๆ มีความเข้มข้นของเอนไซม์คงที่และระดับ pH ที่แตกต่างกัน ด้วยการควบคุมและตัวแปรที่ระบุ คุณสามารถไปยังผลลัพธ์ของคุณได้ (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 1)

สูง : นี่เป็นเรื่องทั่วไปเกินไป แม้ว่าจะสื่อถึงข้อมูลที่ถูกต้องก็ตาม เมื่อระบุผลลัพธ์ สามารถใช้ตัวเลขจริงได้ แทนที่จะบอกว่าอัตราการดูดซึมสูง ให้ระบุว่าสูงเพียงใดเมื่อเปรียบเทียบกับตัวอย่างที่มีอัตราการดูดซึมต่ำ (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 1)

จำนวน : การทดสอบไม่มีวันสิ้นสุด และไม่เป็นไปในทางบวก หลีกเลี่ยงการพูดว่าผลลัพธ์ที่คุณได้รับนั้นถูกต้องหรือแน่นอน เพียงแค่บอกว่าข้อมูลสนับสนุนหรือไม่สนับสนุนสมมติฐานของคุณ (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 1)

อื่นๆ : ประโยคนี้ชัดเจนและรัดกุม บอกผู้อ่านว่าทำไมจึงทำการทดลอง โดยตั้งสมมติฐานว่าเหตุใดเอนไซม์บางชนิดจึงมีประสิทธิภาพมากกว่าเอนไซม์อื่น และอธิบายว่าการทดลองนี้จัดทำขึ้นเพื่อระบุสาเหตุที่ทำให้เกิดความแตกต่างเหล่านี้ (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 2)

540 นาโนเมตร : ประโยคนี้แนะนำเอนไซม์เฉพาะที่กำลังศึกษาและวิธีการศึกษา นอกจากนี้ยังระบุความยาวคลื่นแสงที่ใช้ในสเปกโตรโฟโตมิเตอร์เพื่อบอกผู้อ่านว่าความยาวคลื่นไม่ใช่ตัวแปรหนึ่งในการทดลอง (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 2)

ระดับ : เป็นเรื่องปกติที่จะใช้สรรพนามส่วนตัวในนามธรรม และประโยคนี้ใช้ "we" อย่างมีประสิทธิภาพ นอกจากนี้ยังกำหนดสิ่งที่ทำโดยไม่ต้องลงรายละเอียดมาก มีการระบุการควบคุมและตัวแปรอย่างชัดเจนและรัดกุม เพื่อให้ผู้อ่านทราบว่ามีการทดสอบปัจจัยใดบ้างเพื่อกำหนดผลผลิตของเอนไซม์ (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 2)

สรุปที่ชัดเจน : สองประโยคนี้รวมผลลัพธ์กับข้อสรุป ซึ่งจะช่วยให้ได้ข้อสรุปจากผลลัพธ์ที่ชัดเจนมากสำหรับผู้อ่าน ผู้เขียนยังได้ระบุตัวเลขที่เป็นรูปธรรมในผลลัพธ์เพื่อให้ผู้อ่านทราบว่าอัตราการดูดซับเปลี่ยนแปลงไปในแต่ละตัวอย่างมากน้อยเพียงใด (กลับไปที่ตัวอย่างที่ 2)

ข้อมูลอ้างอิงทั้งหมดจาก Pechenik, Jan A. คู่มือสั้น ๆ ในการเขียนเกี่ยวกับชีววิทยา หน้า 54-102 Tufts University: Harper Collins College Publishers 2536.


ข้อมูลการทดลองและผลลัพธ์

โลหะที่ใช้แล้ว __________________________________________

ทดลอง 1 ทดลอง 2
มวลของโลหะ (g)
อุณหภูมิห้องปฏิบัติการ ( ° NS)
อุณหภูมิห้องปฏิบัติการ (K) NS
ปริมาณของH2 ก๊าซที่ผลิตได้ (มล.)
ปริมาณของH2ก๊าซที่ผลิต (L) วี
ความดันในห้องปฏิบัติการ (atm) NS


แนวทางปฏิบัติ - นมทำให้ฉันป่วย กิจกรรมก่อนแล็บ

นักเรียนจะได้รับการอ่านและคำถามก่อนเรียนแล็บ: Milk Makes Me Sick Lab เอกสารแจกก่อนการทดลองจะทบทวนกระบวนการของเอนไซม์ที่ทำงานในระบบย่อยอาหาร โดยเฉพาะบทบาทของแลคเตสในการย่อยแลคโตส (น้ำตาลนม) เป็นกลูโคสและกาแลคโตส ขอแนะนำให้นักเรียนเก็บบันทึกการบรรยายไว้เป็นข้อมูลอ้างอิงเพื่อทบทวนคำศัพท์ที่เกี่ยวข้องกับเอนไซม์และปฏิกิริยาเคมีในร่างกายมนุษย์ ข้อมูลพื้นฐานจะช่วยเสริมบันทึกการบรรยายที่เพิ่งนำเสนอและให้รายละเอียดของขั้นตอนสำหรับการสืบสวนในห้องปฏิบัติการของวันพรุ่งนี้

นักเรียนจะทบทวนคำตอบของพวกเขาต่อกิจกรรมการอ่านก่อนการทดลองในชั้นเรียนแบบแชร์คู่ เมื่อชั้นเรียนมีโอกาสพูดคุยถึงคำตอบของพวกเขากับคู่ของพวกเขาแล้ว แต่ละคู่จะเลือกโฆษกเพื่อแบ่งปันคำตอบของพวกเขาในกิจกรรมประเภทข้าวโพดคั่วที่หมุนเวียนไปรอบๆ ห้องเพื่อทบทวนคำตอบที่ถูกต้องสำหรับคำถามก่อนการทดลอง

ครูจะทบทวนคำถามในบทความที่นักเรียนระบุว่ายากในการอภิปรายทั้งกลุ่มเพื่อให้แน่ใจว่านักเรียนทุกคนมีโอกาสบันทึกคำตอบที่ถูกต้องในการเตรียมการทดลองในห้องปฏิบัติการในบทเรียนถัดไป

ตัวอย่างผลงานของนักเรียน - กิจกรรมก่อนทดลอง- หลังจากทบทวนงานของนักเรียนแล้ว เห็นได้ชัดว่านักเรียนประสบความสำเร็จในการตอบคำถามที่ตรงกับข้อความที่แน่นอนในการอ่านก่อนสอบในห้องปฏิบัติการ แต่ประสบปัญหาในการถ่ายโอนข้อมูลไปยังแบบจำลอง การวิเคราะห์ที่เปิดหูเปิดตานี้ได้นำไปสู่การทบทวนชั้นเรียนที่มีรายละเอียดมากขึ้นเมื่อการทดสอบหน่วยเข้าใกล้


กฎหมายอัตรา

ในกรณีส่วนใหญ่ อัตราการเกิดปฏิกิริยาจะขึ้นอยู่กับความเข้มข้นของสารตั้งต้นต่างๆ ที่เวลา เสื้อ ตัวอย่างเช่น ในความเข้มข้นที่สูงขึ้นของสารตั้งต้นทั้งหมด สารตั้งต้นจะชนกันบ่อยขึ้นและส่งผลให้เกิดปฏิกิริยาเร็วขึ้น ความสัมพันธ์ระหว่างอัตราการเกิดปฏิกิริยา ν(t) และความเข้มข้นถูกกำหนดเป็น กฎหมายอัตรา. และกฎอัตราสำหรับปฏิกิริยาเคมีทั่วไป aA + bB ---------------> cC + dD คือ:

โดยที่ k คือค่าคงที่อัตรา และกำลัง x และ y คือ คำสั่ง ของปฏิกิริยาที่เกี่ยวกับสารตั้งต้น A และ B กฎอัตราต้องถูกกำหนดโดยการทดลองและไม่สามารถอนุมานได้จากปริมาณปริมาณสัมพันธ์ของปฏิกิริยาเคมีที่สมดุล


10.3: คำถามก่อนการทดลอง - ชีววิทยา

ชื่อ _____________________________________ ส่วน _____

คำถามก่อนสอบ - กล้องจุลทรรศน์

1. ระบุผลงาน 3 ชิ้นของ Antony von Leeuwenhoek และ 3 ผลงานของ Robert Hooke ไปที่
วิทยาศาสตร์ชีววิทยา?

2. อธิบายสั้น ๆ ด้วยคำพูดของคุณว่า กล้องจุลทรรศน์เฟสคอนทราสต์ทำงานอย่างไร การใช้งานคืออะไร?

3. อธิบายสั้น ๆ ด้วยคำพูดของคุณเองว่ากล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องผ่านทำงานอย่างไร

4. อธิบายสั้น ๆ ด้วยคำพูดของคุณเองว่ากล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราดทำงานอย่างไร

5. ระบุฟังก์ชันของส่วนต่างๆ ต่อไปนี้ของกล้องจุลทรรศน์

ร่างกาย "tube" _________________________________________________________

เวทีเครื่องกล ____________________________________________________

ลูกบิดสเตจแบบกลไก _______________________________________________

คลิปเวที ________________________________________________________

ชิ้นส่วนจมูกหมุน ________________________________________________________________

ไอริสไดอะแฟรม __________________________________________________________

ไฟส่องสว่าง (แหล่งกำเนิดแสง) _____________________________________________

เลนส์ใกล้วัตถุ ________________________________________________________________

ปุ่มปรับหยาบ _______________________________________________

ปุ่มปรับละเอียด _________________________________________________

6. กำลังขยายทั้งหมดหมายถึงอะไร

7. parfocal หมายถึงอะไร?

8. การใช้ทรัพยากรที่มีให้คุณ ค้นหาและแนบ photomicrograph ตัวแทนของ a
ตัวอย่างทางชีวภาพที่ถ่ายโดยกล้องจุลทรรศน์แสงแบบผสมซึ่งเป็น TEM (อิเล็กตรอนที่ส่งสัญญาณ
กล้องจุลทรรศน์) และ SEM (กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด) นี่ไม่ได้หมายถึงภาพของ
กล้องจุลทรรศน์

10. ระบุกล้องจุลทรรศน์ชนิดต่างๆ อย่างน้อยสามประเภทที่นักชีววิทยาใช้เพื่อศึกษาเซลล์


10.3 และ 10.4 การกระทำแบบสะท้อนกลับและสมอง NEW GCSE Biology specification

สวัสดี! ยินดีต้อนรับสู่ร้านค้าของฉัน. โปรดสละเวลาสักครู่เพื่อเรียกดู ฉันสร้างกิจกรรมที่นำโดยนักเรียนที่สนุกสนานและโต้ตอบได้สำหรับ KS3, GCSE และชีววิทยาระดับ A ในฐานะครูโรงเรียนมัธยม ฉันได้นำสิ่งที่ฉันต้องการมาโดยตลอดในบทเรียนมาใช้ในแหล่งข้อมูล นั่นคือทรัพยากรคุณภาพสูงที่มีส่วนร่วมซึ่งส่งผลต่อการเรียนรู้อย่างแท้จริง และจำเป็นต้องทำให้เสร็จด้วยความยุ่งยากน้อยที่สุด - ประสิทธิภาพเป็นสิ่งสำคัญยิ่ง นั่นคือเหตุผลที่คุณจะพบแหล่งข้อมูลบทเรียนทั้งหมดของฉันรวมอยู่ในไฟล์เดียว พร้อมใช้งาน!

แบ่งปันสิ่งนี้

เนื้อหาสำหรับข้อกำหนด AQA GCSE Biology ใหม่
แผนการสอน GCSE Biology/การนำเสนอ PowerPoint มีกิจกรรมและทรัพยากรทั้งหมด (ในไฟล์เดียว!) เพื่อให้บรรลุเป้าหมายการเรียนรู้ต่อไปนี้:

1) ปฏิกิริยาตอบสนองคืออะไร - เริ่มต้นสี่รูปหนึ่งคำกิจกรรมการเรียงลำดับโดยสมัครใจหรือไม่สมัครใจ

2) วิธีการทำงานของปฏิกิริยาตอบสนอง - แผ่นงานจริงพร้อมวิธีการและลิงค์วิดีโอตารางผลลัพธ์พร้อมคำถามที่จะตอบจากงานเขียนแบบขยายวิดีโอตรงกับส่วนของร่างกายที่เกี่ยวข้องกับการกระทำสะท้อนกลับเพื่อทำหน้าที่วางส่วนต่าง ๆ ของการกระทำสะท้อนกลับตามลำดับ

3) เหตุใดปฏิกิริยาตอบสนองจึงมีความสำคัญในร่างกายของคุณ - วิดีโอและงานเขียนที่ขยายออกไปตามด้านบน

4) สิ่งที่พื้นที่หลักของสมองทำ - รหัสสีและอธิบายส่วนต่างๆ ของสมองด้วยการประสานงานหน้าที่และการเรียนรู้แผ่นการวางแผนเชิงปฏิบัติและแผ่นงานการวิเคราะห์: จับคู่ส่วนของสมองกับสิ่งที่รับผิดชอบ

5) วิธีที่นักวิทยาศาสตร์ค้นพบเกี่ยวกับโครงสร้างและหน้าที่ของสมอง - วิดีโอเริ่มต้น เชื่อมโยงคำถามในเอกสารการวิเคราะห์เชิงปฏิบัติ

6) How Science Works - คำแนะนำเชิงปฏิบัติ แผ่นงานการวางแผนและแผ่นงานการวิเคราะห์พร้อมตารางที่ต้องกรอก (พิมพ์สไลด์ A4 สำหรับการเขียนเชิงปฏิบัติ) กราฟเพื่อสรุปผลลัพธ์และคำถามติดตาม

กิจกรรมทั้งหมดมาพร้อมกับคำตอบแบบครบวงจรใน PowerPoint สำหรับการประเมินตนเองโดยเพื่อน/ตนเอง

รับทรัพยากรนี้เป็นส่วนหนึ่งของบันเดิลและประหยัดสูงสุดถึง 22%

กลุ่มคือชุดของทรัพยากรที่จัดกลุ่มเข้าด้วยกันเพื่อสอนหัวข้อเฉพาะหรือชุดบทเรียนในที่เดียว

สภาวะสมดุล: หลักการของสภาวะสมดุล, โครงสร้างและหน้าที่ของระบบประสาท, การกระทำสะท้อนกลับ, สมอง, ตา & ปัญหาทั่วไปเกี่ยวกับตา

บทเรียนทั้งหกเรื่องเกี่ยวกับสภาวะสมดุลที่สร้างขึ้นสำหรับข้อกำหนดทางชีววิทยา GCSE ใหม่ บทเรียนที่รวม: 10.1 หลักการของสภาวะสมดุล 10.2 โครงสร้างและหน้าที่ของระบบประสาท 10.3 ปฏิกิริยาสะท้อน 10.4 สมอง 10.5 ตา 10.6 ปัญหาทั่วไปเกี่ยวกับตา


Leaf Disk Pre-Lab

โปรดไปที่ลิงก์ด้านล่างเพื่อดูวิดีโอการทดสอบที่เราจะทำในชั้นเรียน:

ห้องทดลองการสังเคราะห์ด้วยแสงดิสก์แบบลอยตัว

ดัดแปลงมาจาก Leaf Disk Lab ของแบรดวิลเลียมสัน (http://www.elbiology.com/labtools/Leafdisk.html)

บทนำ แสงเป็นส่วนหนึ่งของความต่อเนื่องของรังสีหรือคลื่นพลังงาน ความยาวคลื่นของพลังงานที่สั้นกว่าจะมีพลังงานในปริมาณที่มากกว่า For example, high-energy ultraviolet rays, with wavelengths of approximately 1 nanometer (nm) to 380 nm, can harm living tissues due to the large amount of energy they carry. Wavelengths of light within the visible part of the light spectrum power การสังเคราะห์ด้วยแสง. The visible light spectrum is from about 400 to 750 nm (1 billionth of a meter). Only visible light, with its intermediate wavelengths, has enough energy to cause chemical change without destroying biological molecules. The short, high frequency waves of gamma rays (10-5 nm) have too much energy and break the hydrogen bonds found within biological molecules such as proteins and nucleic acids like DNA. The longer waves of heat, microwaves and radio waves (103 nm to 103 meters) do not possess enough energy and are absorbed by the water molecules in a plant.

When visible light is absorbed by leaf pigments, such as chlorophyll a or b, during the light reactions of การสังเคราะห์ด้วยแสง, electrons within each photosystem are boosted to a higher energy level and replaced by the splitting of H2O molecules. โอ2 gas is released as a byproduct of splitting water. The energy contained in the excited electrons is then used to produce ATP and NADPH, two high-energy molecules. The energy stored in the bonds of these high-energy molecules is then used to break apart and recombine carbon dioxide (CO2) into organic carbon molecules (i.e. glucose) in the light-independent reactions. Plants can then either break down the glucose immediately to release the captured energy in a process called การหายใจ, or can store the glucose molecules as starch and cellulose for later use.

Leaf disks float, normally. When the air spaces are infiltrated with a solution of water, the overall density of the leaf disk increases and the disk sinks. The infiltration solution includes a small amount of sodium bicarbonate (NaHCO3) thus enabling the bicarbonate ion to serve as the carbon source for photosynthesis. As photosynthesis proceeds, oxygen is released into the interior of the leaf, which changes its buoyancy causing the disks to rise. Since cellular respiration is taking place at the same time within the leaf, consuming some of the oxygen and glucose generated by photosynthesis, the rate that the disks rise is an indirect measurement of the สุทธิ rate of photosynthesis. In this lab, you will measure the สุทธิ rate of photosynthesis for several plants under both light and dark conditions.

On your blog, answer the following PRELAB questions:

1. Why is baking soda added to the water for this experiment? For what purpose is it used in this experiment?
It is added to facilitate photosynthesis. It is also used to increase the density of the leaf disk.

2.What causes the leaf disks to float to begin with, and why do we need to use a syringe to make them sink?
Air spaces causes the leaf disks to float. Since the water weighs down the leaves, syringe is needed.

3. What causes the leaf disks to rise? What process are we taking advantage of, and how?
As leaves create oxygen through photosynthesis, leaves rise. Since photosynthesis creates oxygen, it lowers the density of leaves.

4. If the leaf disks rise more quickly, what does that tell you about the rate of photosynthesis? ทำไม?
It means the rate of photosynthesis was quicker because there is more oxygen, which means the process was quicker.

5. Why do the leaf disks sink when they are put in a dark environment? อธิบาย.
It sinks because the leaf disks cannot do photosynthesis. Since it can’t process photosynthesis, oxygen cannot be created.

6. If we were to use three differently colored light filters (1) Dark blue = 425nm, 2) Green = 550nm, 3) Orange = 675nm light only), which wavelength of light would cause the leaves to rise the fastest in 5 minutes? Which would cause the leaves to rise the slowest? Use the graph below to justify your response.
Dark blue would be the fastest because it lets the most amount of energy into the leaf. Then it is orange and green. This is because their amount of light energy decreases. Green light will be reflected off because the plant itself is green.

BONUS QUESTION: If both photosynthesis and cellular respiration are occurring at the same time, why can we determine that the leaves float primarily due to the production of O2 gas, and not CO2 gas bubbles?


Biology Lab Questions

Safety glasses or safety goggles should always be worn inside a chemistry lab to protect your eyes.

2. Should you add acid to water or water to acid?

3. Where should you dispose of broken glass?

They should be placed in the proper container for the disposal of sharps. They should never be tossed into a regular trash can.

4. What should you do if you spill a chemical on your hand?

You should immediately wash your hands with copious amounts of water and antibacterial soap.

Exercise 1: What Is It?

A chemical laboratory contains special equipment to use while you are performing an experiment. Locate each of the items pictured on the following pages in your lab kit, and place a check mark in the appropriate place when you find it. After you have completed this, sketch a picture and name any additional items that are located in your lab kit, classroom, or home that are likely to be useful for you in completing these labs.

50 mL ____x_____

Stir Stick__x_______

250 mL ___x______ Graduated Cylinder

Test Tube ___x______ Pipette ___x______ Petri Dish ___x______

Include your Drawings Here:

Experiment 1: Neutralization of Acids and Bases

In this experiment, you will learn how to properly neutralize and dispose of acidic and basic solutions.

วัสดุ5 mL 4.5% Acetic Acid (vinegar), C2H4O2 (1) 10 mL Graduated Cylinder 8 Litmus Test Strips (Neutral) Permanent Marker 2 Pipettes 1 g Sodium Bicarbonate (baking soda), NaHCO3 4 Weigh Boats *Water*You Must Provide

1. Use the permanent marker to label three of the weigh boats as A – C.

2. Measure and pour approximately 5 mL of water into weigh boat “A”.

3. Add 0.5 g sodium bicarbonate to weigh boat “B”.

4. Measure and pour approximately 5 mL of water into weigh boat “B”. Gently pipette the solution up and down until the sodium bicarbonate is fully dissolved in the water.

5. Measure and pour 5 mL acetic acid solution to weigh boat “C”.

6. Use the litmus test strips to determine if the substances in weigh boats A – C are acidic or basic. This is accomplished by briefly dipping an unused strip of the litmus paper in each of the weigh boats. Record your color results in Table 2.

7. Pipette 1 mL of the sodium bicarbonate solution from weigh boat “B” into weigh boat “C”. Gently swirl weigh boat “C” to mix.

8. Develop and record a hypothesis regarding the pH of weigh boat “C”. Record this in the Post-Lab Questions section.

9. Test the pH of weigh boat “C” using new litmus paper. Record your result in Table 3.

10. Repeat Step 9 four more times until all the sodium bicarbonate has been added to weigh boat “C”.

Table 2: Initial Litmus Test Results
Weigh BoatChemical ContentsLitmus ResultsAdditional Observations
NS
NS
Table 3: Neutralization of an Acid
Amount of BaseLitmus Result
1 มล
2 mL
3 mL
4 mL
5 mL

Post-Lab Questions

1. State your hypothesis (developed in Step 8) here. Be sure to include what you think the pH will be, and why.

2. What is a neutralization reaction?

3. When might neutralization reactions be used in a laboratory setting?

4. At what point was the acetic acid in weigh boat “C” neutralized?

5. What do you think would have been the results if a stronger solution of sodium bicarbonate was used? Would it take more or less to neutralize the acid? What about a weaker concentration of sodium bicarbonate?

Pre-lab Questions

1. List the atomic numbers for each of the following elements.

เหล็ก_________ออกซิเจน_________
แคลเซียม_________ไนโตรเจน_________
โพแทสเซียม_________ไฮโดรเจน_________

2. What determines if a bond is polar?

3. Use the periodic table to determine if potassium chloride (KCl) formed through covalent or ionic bonds? Use evidence from the Introduction to support your answer.

4. Research two common, polar molecules and two common nonpolar molecules. Draw their molecular structure and explain how the structure makes each molecule polar or non-polar.

Experiment 1: Slime Time

Inks can be polar or non-polar. Polar solvents pick up polar inks, while non-polar solvents pick up non-polar inks. In this experiment, you will use inks to identify slime and silly putty as polar or non-polar. You will also use paper chromatography to verify the inks are correctly identified as polar or non-polar.

วัสดุ(1) 250 mL Beaker 5 mL 4% Borax Solution, Na2B4O7·10H2O Dry Erase Marker (1) 10 mL Graduated Cylinder (1) 100 mL Graduated Cylinder Filter Paper (Disk) Filter Paper (Square) 0.5 g Guar Gum Highlighter Permanent Marker 1 Popsicle StickSilly Putty® Ruler Wooden Stir Stick Uni-ball® Roller Pen *Distilled or Tap Water *Newspaper *Notebook Paper *Scissors *You Must Provide

Part 1: Making Slime

1. Weigh out 0.5 g of guar gum into a 250 mL beaker.

2. Measure 50.0 mL of distilled water into a 100 mL graduated cylinder and pour it into the 250 mL beaker that contains the guar gum.

3. Rapidly stir the mixture with a wooden stir stick for three minutes, or until the guar gum is dissolved.

4. Measure 4.00 mL of a 4% Borax solution into a 10 mL graduated cylinder and add it to the guar gum and water.

5. Stir the solution until it becomes slime. This will take a few minutes. If the slime remains too runny, add an additional 1.0 mL of the 4.0% Borax solution and continue to stir until the slime is the slightly runny or gooey.

6. Once you are satisfied with the slime, pour it into your hands. Be sure not to drop any of it on to the floor.

7. Manipulate the slime in your hands. Write down observations made about how slime pours, stretches, breaks, etc. in Part 1 of the Data section. CAUTION: Slime is slippery and if dropped it can make the work area slick.

8. Place the slime back into the beaker and WASH YOUR HANDS.

Part 2: Slime and Putty Ink Tests

1. On a piece of notebook paper make one 20 – 25 mm long mark of each of the inks you are testing (permanent marker, highlighter, Dry Erase, and Uni-ball® Roller Pen). Space the marks at least one inch apart. Use a pencil to label each mark with its description.

NS. Water soluble inks include those in highlighters and certain pens.

NS. Water insoluble inks include those in a permanent pen/markers, newsprint, and a dry-erase markers.

2. While the inks are drying, select a passage or a picture in the newspaper to test with the slime.

3. Develop a hypothesis stating whether or not you believe the slime produced in Part 1 will pick up newsprint ink. Record this hypothesis in the Post-Lab Questions section. Then, break off a small piece of slime that is 3 – 5 cm in diameter. Gently place this piece on top of the newspaper print, then carefully pick it up again.

4. Observe and record in Table 1 whether or not the ink was picked up onto the slime.

5. Break off another small piece of slime. Once the inks from Step 1 have dried gently place the slime on top of the first spot on the notebook paper, then carefully pick it up. Repeat this for each of the inks. Observe and record which inks were picked up (dissolved) by the slime in Table 1.

6. Repeat this ink testing two more times for accuracy.

7. Hypothesize which inks the silly putty will pick up in the Part 2 of the Data section. Then, perform the ink tests with the Silly Putty® according to the procedure outlined in Steps 5 – 6.

Part 3: Chromatography of Ink Samples

รูปที่ 7:Chromatography apparatus for Procedure Part 3.

1. Use a pencil or scissors to poke a เล็ก hole in the center of a piece of filter paper (see Figure 7).

2. Spot the filter paper evenly spaced approximately 2 cm from the small hole with the two insoluble inks and the two soluble inks that were used in Part 2, Step 1.

3. Obtain a ½ piece of filter paper. Fold the paper in half several times so that it makes a narrow wick.

4. Insert the wick into the hole of the spotted paper so that it is above the top of the filter paper by approximately 2 cm.

5. Fill a 250 mL beaker ¾ full with water.

6. Set the filter paper on top of the beaker so that the bottom of the wick is in the water. The paper should hang over the edge of the beaker with the spotted side up.

7. Allow water to travel until it is approximately 1 cm from the edge of the filter paper. Remove the filter paper from the beaker.

8. Observe which inks moved from where they were originally spotted. Record your observations in Part 3 of the Data section.

Table 1: Results of Ink Testing for Silly Putty®
Name of InkPicked up (dissolved)Did not pick up
Trial 1Trial 2Trial 3Trial 1Trial 2Trial 3
Newsprint
Highlighter
Uni-ball® Roller Pen
เครื่องหมายถาวร
Dry Erase Marker

· Hypothesis for Silly Putty® (Procedure Part 2, Step 7):

· Observations of inks following chromatography:

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis regarding the slime’s ability to pick up newsprint ink here.

2. Did the slime pick up water soluble or water insoluble inks? From these results, what can you conclude about the polarity of slime molecules?

3. Explain how you determined your hypothesis about whether or not silly putty would pick up water soluble inks. Was your hypothesis correct?

4. Were the inks you used properly classified as soluble and insoluble? อธิบายคำตอบของคุณ.

Pre-Lab Questions

1. Nitrogen fixation is a natural process by which inert or unreactive forms of nitrogen are transformed into usable nitrogen. Why is this process important to life?

2. Given what you have learned about the hydrogen bonding shared between nucleic acids in DNA, which pair is more stable under increasing heat: adenine and thymine, or cytosine and guanine? อธิบายว่าทำไม.

3. Which of the following is not an organic molecule methane (CH4), fructose (C6H12O6), rosane (C20H36), or ammonia (NH3)? คุณรู้ได้อย่างไร?

Experiment 1: Testing for Proteins

The protein molecules in many foods provide the amino acid building blocks required by our own cells to produce new proteins. To determine whether a sample contains protein, a reagent called Biuret solution is used. Biuret solution contains copper ions. However, the chemical state of the copper ions in Biuret solution causes them to form a chemical complex with the peptide bonds between amino acids (when present), changing the color of the solution. Biuret solution is normally blue, but changes to pink when short peptides are present and to violet when long polypeptides are present.

รูปที่ 6:Biuret solution only is located on the far left side of the image (blue). Note the transition from blue to violet as proteins are added to the solution, causing the solution to transition from blue to violet.
วัสดุ(2) 250 mL Beakers 25 Drops Biuret Solution, H2NC(O)NHC(O)NH (1) Knox® Gelatin Packet 5 mL 1% Glucose Solution, C6H12O6 (1) 10 mL Graduated Cylinder (1) 100 mL Graduated Cylinder Permanent Marker 5 Pipettes5 Test Tubes (Plastic) Test Tube Rack 5 mL Unknown Solution *Tap Water *Hot Water *Egg White *You Must Provide

1. Label five test tubes 1, 2, 3, 4 and 5.

2. Prepare your testing samples as follows:

NS. Mix one egg white with 25 mL water in a 250 mL beaker to create an albumin solution. Pipette 5 mL of this solution into Test Tube 1.

NS. Mix the packet of Knox® gelatin with 50 mL hot water in a second 250 mL beaker. Stir until dissolved. Pipette 5 mL of this solution into Test Tube 2.

3. Pipette 5 mL of the 1% glucose solution into Test Tube 3.

4. Use the 10 mL graduated cylinder to measure and pour 5 mL of water into Test Tube 4.

5. Pipette 5 mL of the “Unknown Solution” into Test Tube 5.

6. Record the initial color of each sample in Table 1.

7. Develop a hypothesis regarding what you predict will happen when Biuret solution is added to Tubes 1 – 4. Record your hypothesis in the Post-Lab Question section. Then, pipette five drops of Biuret solution to each test tube (1 – 5). Swirl each tube to mix.

8. Record the final color in Table 1. Note: Protein is present in the sample if a light purple color is observed.

Table 1: Testing for Proteins Results
ตัวอย่างสีเริ่มต้นสีสุดท้ายProtein Present
1 – Albumin Solution
2 – Gelatin Solution
3 – Glucose
4 – Water
5 – Unknown

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis about what will happen when Biuret solution is mixed with the solutions from test tubes 1, 2, 3, and 4 here. Be sure to use scientific reasoning to support your hypothesis.

2. Write a statement to explain the molecular composition of the unknown solution based on the results obtained during testing with each reagent.

3. Diet and nutrition are closely linked to the study of biomolecules. How should you monitor your food intake to insure the cells in your body have the materials necessary to function?

4. The molecule pictured below produced a blue color when tested with Benedict’s reagent, a yellow color when tested with IKI, and a violet color when tested with Biuret reagent. Based on the structure shown below and these chemical results, what kind of biomolecule is this?

Pre-Lab Questions

1. A concentration gradient affects the direction that solutes diffuse. Describe how molecules move with respect to the concentration.

2. How does the size of a solute affect the rate of diffusion? Consider the size and shape of a molecule in your response.

3. Does polarity affect diffusion? Explain your answer using scientific principles.

Experiment 1: Diffusion through a Liquid

In this experiment, you will observe the effect that different molecular weights have on the ability of dye to travel through a viscous medium.

วัสดุ1 60 mL Corn Syrup Bottle, C12H22O11 Red and Blue Dye Solutions (Blue molecular weight = 793 g/mole Red molecular weight = 496 g/mole) (1) 9 cm Petri Dish (top & bottom halves)Ruler *Stopwatch *Tape *You Must Provide

1. Use clear tape to secure one half (either the bottom or the top half is fine) of the petri dish over a ruler. Make sure that you can read the measurement markings on the ruler through the petri dish. The dish should be positioned with the open end of the dish facing upwards.

2. Carefully fill the half of the petri dish with corn syrup until the entire surface is covered.

3. Develop a hypothesis discussing which dye you believe will diffuse faster across the corn syrup and why. Record this in the Post-Lab Questions section. Then, place a single drop of blue dye in the middle of the corn syrup. Note the position where the dye fell by reading the location of the outside edge of the dye on ruler.

4. Record the location outside edge of the dye (the distance it has traveled) every ten seconds for a total of two minutes. Record your data in Tables 1 and 2.

5. Repeat Steps 1 – 4 using the red dye, the second half of the petri dish, and fresh corn syrup.

Table 1: Rate of Diffusion in Corn Syrup
Time (sec)Blue DyeRed DyeTime (sec)Blue DyeRed Dye
10 70
20 80
30 90
40 100
50 110
60 120
Table 2: Speed of Diffusion of Different Molecular Weight Dyes
โครงสร้างน้ำหนักโมเลกุลTotal Distance Traveled (mm)Speed of Diffusion (mm/hr)*
Blue Dye
Red Dye

*Multiply the total distance diffused by 30 to get the hourly diffusion rate

Post-Lab Questions

1. Record your hypothesis from Step 3 here. Be sure to validate your predictions with scientific reasoning.

2. Which dye diffused the fastest?

3. Does the rate of diffusion correspond with the molecular weight of the dye?

4. Does the rate of diffusion change over time? ทำไมหรือทำไมไม่?

5. Examine the graph below. Does it match the data you recorded in Table 2? Explain why, or why not. Submit your own plot if necessary.

Experiment 2: Concentration Gradients and Membrane Permeability

In this experiment, you will dialyze a solution of glucose and starch to observe:

· The directional movement of glucose and starch.

· The effect of a selectively permeable membrane on the diffusion of these molecules.

An indicator is a substance that changes color when in the presence of the substance it indicates. In this experiment, IKI will be used an indicator to test for the presence of starch and glucose.

วัสดุ(5) 100 mL Beakers 10 mL 1% Glucose Solution, C6H12O6 4 Glucose Test Strips (1) 100 mL Graduated Cylinder 4 mL 1% Iodine-Potassium Iodide, IKI 5 mL Liquid Starch, C6H10O5 3 Pipettes 4 Rubber Bands (Small contain latex, handle with gloves on if allergic)*Stopwatch *Water *Scissors *15.0 cm Dialysis Tubing *You Must Provide *Be sure to measure and cut only the length you need for this experiment. Reserve the remainder for later experiments.
ความสนใจ!Do not allow the open end of the dialysis tubing to fall into the beaker. If it does, remove the tube and rinse thoroughly with water before refilling with a starch/glucose solution and replacing it in the beaker.
บันทึก:· Dialysis tubing can be rinsed and used again if you make a mistake.· Dialysis tubing must be soaked in water before you will be able to open it up to create the dialysis “bag”. Follow the directions for the experiment, beginning with soaking the tubing in a beaker of water. Then, place the dialysis tubing between your thumb and forefinger and rub the two digits together in a shearing manner. This should open up the “tube” so you can fill it with the different solutions.

1. Measure and pour 50 mL of water into a 100 mL beaker. Cut a piece of dialysis tubing 15.0 cm long. Submerge the dialysis tubing in the water for at least 10 minutes.

2. Measure and pour 82 mL water into a second 100 mL beaker. This is the beaker you will put the filled dialysis bag into in Step 9.

3. While the dialysis bag is still soaking, make the glucose/sucrose mixture. Use a graduated pipette to add five mL of glucose solution to a third beaker and label it “Dialysis bag solution”. Use a different graduated pipette to add five mL of starch solution to the same beaker. Mix by pipetting the solution up and down the pipette six times.

4. Using the same pipette that you used to mix the dialysis bag solution, remove two mL of that solution and place it in a clean beaker. This sample will serve as your positive control for glucose and starch.

NS. Dip one of the glucose test strips into the two mL of glucose/starch solution in the third beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose test strip in Table 3. This is your positive control for glucose.

NS. Use a pipette to transfer approximately 0.5 mL of IKI to into the two mL of glucose/starch solution in the third beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose/starch solution in the beaker in Table 3. This is your positive control for starch.

5. Using a clean pipette, remove two mL of water from the 82 mL of water you placed in a beaker in Step 2 and place it in a clean beaker. This sample will serve as your negative control for glucose and starch.

NS. Dip one of the glucose test strips into the two mL of water in the beaker. After one minute has passed, record the final color of the glucose test strip in Table 3. This is your negative control for glucose.

NS. Use a pipette to transfer approximately 0.5 mL of IKI to into the two mL of water in the beaker. After one minute has passed, record the final color of the water in the beaker in Table 3. This is your negative control for starch.

Note: The color results of these controls determine the indicator reagent key. You must use these results to interpret the rest of your results.

6. After at least 10 minutes have passed, remove the dialysis tube and close one end by folding over 3.0 cm of one end (bottom). Fold it again and secure with a rubber band (use two rubber bands if necessary).

7. Make sure the closed end will not allow a solution to leak out. You can test this by drying off the outside of the dialysis bag with a cloth or paper towel, adding a small amount of water to the bag, and examining the rubber band seal for leakage. Be sure to remove the water from the inside of the bag before continuing.

8. Using the same pipette which was used to mix the solution in Step 3, transfer eight mL of the solution from the Dialysis Bag Solution beaker to the prepared dialysis bag.

รูปที่ 4:Step 9 reference.

9. Place the filled dialysis tube in beaker filled with 80 mL of water with the open end draped over the edge of the beaker as shown in Figure 4.

10. Allow the solution to sit for 60 minutes. Clean and dry all materials except the beaker with the dialysis bag.

11. After the solution has diffused for 60 minutes, remove the dialysis tube from the beaker and empty the contents into a clean, dry beaker. Label it dialysis bag solution.

12. Test the dialysis bag solution for the presence of glucose and starch. Test for the presence of glucose by dipping one glucose test strip into the dialysis bag directly. Again, wait one minute before reading the results of the test strips. Record your results for the presence of glucose and starch in Table 4. Test for the presence of starch by adding two mL IKI. Record the final color in Table 4 after one minute has passed.

13. Test the solution in the beaker for glucose and starch. Use a pipette to transfer eight mL of the solution in the beaker to a clean beaker. Test for the presence of glucose by dipping one glucose test strip into the beaker. Wait one minute before reading the results of the test strip and record the results in Table 4. Add two mL of IKI to the beaker water and record the final color of the beaker solution in Table 4.

Table 3: Indicator Reagent Data
IndicatorStarch Positive Control (Color)Starch Negative Control (Color)Glucose Positive Control (Color)Glucose Negative Control (Color)
IKI Solution n/an/a
Glucose Test Stripn/an/a
Table 4: Diffusion of Starch and Glucose Over Time
IndicatorDialysis Bag After 1 HourBeaker Water After 1 Hour
IKI Solution
Glucose Test Strip

Post-Lab Questions

1. Why is it necessary to have positive and negative controls in this experiment?

2. Draw a diagram of the experimental set-up. Use arrows to depict the movement of each substance in the dialysis bag and the beaker.

3. Which substance(s) crossed the dialysis membrane? Support your response with data-based evidence.

4. Which molecules remained inside of the dialysis bag?

5. Did all of the molecules diffuse out of the bag into the beaker? ทำไมหรือทำไมไม่?


ดูวิดีโอ: วชาชววทยา - ตวอยางการทดลองทางชววทยา (อาจ 2022).