ข้อมูล

ฟอเรซิสและเวกเตอร์เชิงกล

ฟอเรซิสและเวกเตอร์เชิงกล



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

ตามวิกิพีเดียและปรสิตวิทยาของมนุษย์ โดย Burton Jerome Bogitsh, Clint Earl Carter, Thomas N. Oeltmann

Phoresis: ในความสัมพันธ์แบบพึ่งพาอาศัยกันประเภทนี้ phoront ซึ่งมักจะเป็นสิ่งมีชีวิตที่เล็กกว่า จะถูกขับเคลื่อนโดยกลไกโดยอีกสิ่งมีชีวิตหนึ่ง ซึ่งมักจะเป็นสิ่งมีชีวิตที่ใหญ่กว่าโฮสต์

โฮสต์ที่ทำหน้าที่เป็นพาหะสามารถเรียกว่าเวกเตอร์เชิงกลได้หรือไม่?

ในการค้นหา google.books ฉันพบหนังสือบางเล่มที่กล่าวถึง:

เช่นเดียวกับปรสิตวิทยาคลินิก

โฮสต์ที่ส่งปรสิตไปยังมนุษย์คือพาหะ สิ่งที่จำเป็นในวงจรชีวิตคือพาหะทางชีววิทยา ที่ไม่จำเป็น เป็นเวกเตอร์ phoretic หรือเครื่องกล.


เวกเตอร์เชิงกลเช่นเดียวกับเวกเตอร์ชีวภาพส่งปรสิตไปยังโฮสต์บังคับ แต่พามันบนพื้นผิวของร่างกายในขณะที่โฮสต์ใน phoresis ไม่จำเป็นต้องถือ phoront ไปยังโฮสต์บังคับ (สำหรับปฏิสัมพันธ์ของปรสิต)

ความสัมพันธ์แบบเวกเตอร์ระหว่างปรสิตและกลไกอาจเป็นการทำนายแบบหนึ่ง


การแพร่กระจายของไวรัสพืช: 8 วิธี | ไวรัสวิทยา

ประเด็นต่อไปนี้เน้นถึงแปดวิธีหลักที่ใช้ในการแพร่ไวรัสพืช วิธีการคือ 1. การแพร่เชื้อโดยเมล็ดพันธุ์ 2. การแพร่กระจายโดยการขยายพันธุ์พืช 3. การแพร่โดยวิธีทางกล 4. การแพร่โดย Cuscuta 5. การแพร่กระจายของดิน 6. การแพร่กระจายของแมลง 7. การแพร่ระบาดโดยเชื้อรา 8. ไวรัสที่อาศัยอยู่ในดินบางชนิดมีพาหะของไส้เดือนฝอย

วิธีที่ # 1 การแพร่เชื้อของเมล็ดพันธุ์:

ก่อนหน้านี้การแพร่เชื้อผ่านเมล็ดพืชเจ้าบ้านถือว่ามีส่วนน้อยในการแพร่กระจายของโรคไวรัส เมื่อเร็ว ๆ นี้ Bennett (1969) ระบุไวรัส 53 ตัวซึ่งแพร่กระจายโดยเมล็ดพืชประมาณ 124 สายพันธุ์

เมล็ดพืชมีความสำคัญในการแพร่กระจายของไวรัสบางชนิดในพืชตระกูลถั่ว แตงกวาป่า มะเขือเทศ และไวรัสหัวผักกาดของน้ำตาลบีท ในกรณีหลังนี้ เมล็ดพืชมีเปอร์เซ็นต์ของไวรัสสูง อย่างไรก็ตามไวรัสไม่เข้าสู่ตัวอ่อน มันอยู่ในส่วนหนึ่งของเมล็ดของพืชที่เป็นโรค

วิธี # 2. การแพร่กระจายโดยการขยายพันธุ์พืช:

เป็นวิธีการหลักในการแพร่เชื้อไวรัส โดยเฉพาะมันฝรั่ง กุหลาบ อ้อย ราสเบอร์รี่ สตรอว์เบอร์รี ผักกาด หัวผักกาด ไม้ผล และไม้ประดับหลายชนิด

ส่วนที่เป็นพืช พืชที่ติดเชื้อ เช่น หัว หัว ราก หน่อ หน่อ และกิ่ง ซึ่งใช้สำหรับการขยายพันธุ์ จะมีไวรัสอยู่ในพ่อแม่ พืชชนิดใหม่ที่ถูกเลี้ยงโดยวิธีการปลูกพืชที่กล่าวมาข้างต้นนั้นมักจะติดเชื้อตลอดเวลา

วิธี # 3. การส่งผ่านโดยวิธีทางกล:

ไวรัสโมเสคจำนวนมากถูกส่งผ่านกลไกจากพืชที่เป็นโรคไปสู่พืชที่มีสุขภาพดีโดยวิธีการดังต่อไปนี้:

(i) โดยการสัมผัสของใบที่ติดเชื้อและมีสุขภาพดีซึ่งเกิดจากลม

(ii) โดยการถูน้ำผลไม้ของพืชที่เป็นโรคเหนือผิวใบของพืชที่มีสุขภาพดี

(iii) โดยการต่อกิ่งตาที่ติดเชื้อบนพืชที่มีสุขภาพดี

(iv) เครื่องมือทางการเกษตรก็มีส่วนสำคัญเช่นกัน มีดที่ใช้ตัดเมล็ดและกรรไกรตัดแต่งกิ่งจะทำให้โรคแพร่กระจาย

(v) ไวรัสบางชนิดแพร่กระจายอยู่ใต้พื้นดินโดยการสัมผัสระหว่างรากของพืชที่เป็นโรคและพืชที่แข็งแรง

(vi) การจัดการพืชในเวลาปลูกและในการดำเนินงานทางวัฒนธรรมจะช่วยในการแพร่กระจายของไวรัสเช่นหัวบีทน้ำตาล Curly top virus และ Cucumber mosaic virus

วิธี # 4. การส่งโดย Cuscuta:

ในหลายกรณี Dodder (Cuscuta) ทำหน้าที่เป็นตัวส่งสัญญาณและสะพานเชื่อมที่มีประสิทธิภาพระหว่างโฮสต์ที่ติดเชื้อและพืชที่มีสุขภาพดีโดยสร้างการติดต่อทางชีวภาพที่ใกล้ชิดผ่านเฮาส์โทเรีย

วิธี # 5. การส่งผ่านดิน:

ไวรัสจำนวนมากถูกส่งผ่านดิน ตัวอย่างทั่วไปของไวรัสที่เกิดจากดิน ได้แก่ ไวรัสโมเสกมันฝรั่ง โมเสกข้าวโอ๊ต โมเสกข้าวสาลี ฯลฯ ในทุกกรณี โรคนี้จะติดต่อจากดิน

วิธี # 6. การแพร่กระจายของแมลง:

ไวรัสพืชและสัตว์บางชนิดแพร่กระจายและนำอนุภาคที่สมบูรณ์เข้าสู่เซลล์เจ้าบ้านโดยพาหะของสัตว์ขาปล้องและแม้กระทั่งจากการถูกสุนัขกัดเช่นเดียวกับในโรคพิษสุนัขบ้า ในบรรดาสัตว์ขาปล้องตัวแทนที่สำคัญที่สุดในการแพร่กระจายของโรคไวรัสคือแมลง

แมลงที่เป็นพาหะนำโรคเรียกว่าพาหะ แมลงพาหะที่มีบทบาทสำคัญในการแพร่กระจายของไวรัสพืช ได้แก่ เพลี้ยอ่อน เพลี้ยจักจั่น ด้วงหนี แมลงเกล็ด เพลี้ยไฟ และแมลงหวี่ขาว

แมลงพาหะส่วนใหญ่เป็นแมลงดูด เพลี้ยส่งไวรัสพืชมากกว่าแมลงชนิดอื่นๆ เพลี้ยจักจั่นมาในรายการ เป็นที่ทราบกันดีว่าโรคไวรัสพืชประมาณสามร้อยชนิดมีพาหะแทรก

เม็ดมีดได้รับไวรัสผ่านทางส่วนปากของมันในขณะที่ให้อาหารแก่พืชที่เป็นโรค จากนั้นจึงฉีดวัคซีนในพืชที่มีสุขภาพดีโดยใช้ส่วนปาก การฉีดวัคซีนในหลายกรณีต้องอยู่ในเนื้อเยื่อบางอย่างหรือบนใบอ่อน

ไวรัสอาจยังคงอยู่ในร่างกายของเวกเตอร์เป็นเวลาหลายวัน อย่างไรก็ตาม อินสแตนซ์จะทราบได้เมื่อการแพร่ระบาดจะหายไปในไม่ช้า นอกจากนี้ยังมีกรณีที่เวกเตอร์ไม่สามารถแพร่เชื้อไปยังพืชที่มีสุขภาพดีได้ทันทีหลังจากที่มันได้รับอาหารจากพืชที่เป็นโรค

มีความล่าช้าในการพัฒนาพลังการติดเชื้อภายในเวกเตอร์ ระยะการพัฒนาของการติดเชื้อไวรัสภายในเวกเตอร์นี้เรียกว่าระยะฟักตัว ระยะเวลาของระยะฟักตัวแตกต่างกันไปตามไวรัสที่แตกต่างกันตั้งแต่สองสามชั่วโมงจนถึงวัน

ดูเหมือนว่าจะมีความสัมพันธ์บางอย่างระหว่างไวรัสพืชกับแมลงพาหะนำโรค ยังไม่ทราบลักษณะที่แน่นอนของความสัมพันธ์นี้ โรคไวรัสของหัวบีทน้ำตาลที่เรียกว่าใบหยิกหรือยอดหยิกนั้นแพร่กระจายโดย Circulifer tenellus ของ leaf-hopper

แมลงดูดอื่นๆ ที่กินหัวบีทน้ำตาลไม่สามารถแพร่เชื้อไวรัสนี้ได้ ในทางกลับกัน เพลี้ยอ่อนพีชเป็นเวกเตอร์ของไวรัส Sugar beet mosaic เพลี้ยจักจั่นไม่ส่งไวรัสนี้ Thirps แพร่เชื้อไวรัสด่างพร้อย พาหะของไวรัสกลุ่มสีเหลืองทั้งหมดเป็นเพลี้ยจักจั่นและกลุ่มโมเสกเป็นเพลี้ย

วิธี # 7. การส่งผ่านเชื้อรา:

กอร์กอนค้นพบหลักฐานแรกของเชื้อราในฐานะพาหะนำโรคพืชในปี 2501 ฟีพบว่าผักกาดหอมที่เป็นโรคนั้นติดเชื้อโอลพิเดียมในดินอย่างสม่ำเสมอ ต่อมาเขาค้นพบว่าเชื้อราทำหน้าที่เป็นแหล่งกักเก็บและพาหะของไวรัสเส้นเลือดใหญ่

ไวรัสที่ได้รับจากเชื้อรายังคงอยู่ใน oospore หลังงอกและผลิต Zoospores ซึ่งทำหน้าที่เป็นสารติดเชื้อและเจาะรากผักกาดหอม ในทำนองเดียวกัน Teakle (1960) รายงานว่าไวรัสเนื้อร้ายจากยาสูบได้เข้าสู่รากของโฮสต์โดย zoospores ของ O. brassicae

วิธี # 8. ไวรัสที่อาศัยอยู่ในดินบางชนิดมีเวกเตอร์ไส้เดือนฝอย:

ไวรัสในสัตว์อาจเข้าถึงสัตว์ที่สูงกว่าทางปากและจมูกจากฝุ่นหรืออาหารที่ปนเปื้อน นอกจากการติดเชื้อจากภายนอกแล้ว ไวรัสยังสามารถถ่ายทอดจากเซลล์หนึ่งไปยังอีกเซลล์หนึ่งได้ แต่การแพร่เชื้อภายในไม่จำเป็นต้องอยู่ในรูปของอนุภาคไวรัส


ก่อนที่เราจะเริ่มต้น สายพันธุ์คือ ทวินาม

นักวิทยาศาสตร์ชาวสวีเดน Carolus von Linnaeus (1707-1778) ได้พัฒนาระบบทวินามของระบบการตั้งชื่อที่ยังคงใช้อยู่ในปัจจุบัน ตัวอย่างเช่น ให้ใช้สปีชีส์ โฮโมเซเปียนส์ ("มนุษย์" ถึงคุณ นักชีววิทยาระดับโมเลกุล) ตุ๊ด คือสกุล เซเปียนส์ เป็นชื่อเล็กน้อย (เรื่องไม่สำคัญ หรือฉายาเฉพาะ) และรวมกันเป็นสปีชีส์ ฉายา เซเปียนส์ ไม่ใช่สปีชีส์แม้ว่าข้อความพื้นฐานบางข้อความจะผิดพลาดก็ตาม จดจำ. สปีชีส์เป็นทวินาม ("สองชื่อ")

ตอนนี้ใครๆ ก็คิดว่าคำอธิบายง่ายๆ ของฉันก็เพียงพอแล้ว แต่คงไม่ใช่สำหรับบางท่าน คุณจะต้องการทดสอบนี้ในการสอบครั้งแรกของคุณ ฉันจะมีคำถามเกี่ยวกับการสอบ โดยที่ (เช่น) ฉันขอประเภทและนักเรียนส่วนใหญ่จะเขียนได้ถูกต้อง "โฮโม". อย่างไรก็ตาม พวกคุณบางคนจะพยายามออกแบบคำถามและคำตอบใหม่ "โฮโมเซเปียนส์". สิ่งนี้ไม่ถูกต้องเนื่องจากคุณให้สายพันธุ์ ไม่ใช่สกุล ส่วนคำถามอื่นๆ ผมจะถามนักเรียนเกี่ยวกับสายพันธุ์และพวกเขาจะเขียนว่า "เซเปียนส์" หรือ "เอช เซเปียนส์"ซึ่งผิดทั้งคู่เพราะที่ให้มานั้นเป็นชื่อสามัญมากกว่าชื่อสปีชีส์

ดังนั้น เพื่อเจาะลึกแบบฝึกหัดนี้ให้มากขึ้น สมมติว่าฉันขอให้คุณเขียนสายพันธุ์สำหรับแมลงปอมนุษย์ คำตอบที่ถูกต้องคือ Dermatobia hominis. อย่างไรก็ตาม พวกคุณบางคนจะเขียนว่า “ด.โฮมินิส”ซึ่งเป็นตัวย่อที่ไม่ถูกต้องและสามารถอ้างถึงแบคทีเรียได้เป็นอย่างดี เดอร์มาแบคเตอร์ โฮมินิส. หลายๆ คนมักจะเขียนว่า "โฮมินิส"ซึ่งจะผิดมากและอาจหมายถึงชนิดพันธุ์ เช่น แบคทีเรีย แอคติโนบาซิลลัส โฮมินิส, คาร์ดิโอแบคทีเรียม โฮมินิส, เดอร์มาแบคเตอร์ โฮมินิส, แฟคลาเมีย โฮมินิส, หรือ Staphlococcus hominis, มัยโคพลาสซึม มัยโคพลาสมา โฮมินิส, พวกปรสิต protists บลาสโตซิสติส โฮมินิส, เอนเทอโรโมนัส โฮมินิส, Pentatrichomonas hominis, ซาร์โคซิสติส โฮมินิส, หรือ Trachipleistophora hominisหรือแม้แต่ไดเจเน่ Gastrodiscoides hominis. ตอนนี้ เรายังสามารถใช้ฉายา "โคไล" เป็นตัวอย่าง (เช่น Escherichia coli, บาแลนทิเดียม โคไล, Entamoeba coli. ). ฉันต้องการพูดมากขึ้น?


การระบุแมลงสาบเป็นเวกเตอร์กลไกสำหรับการติดเชื้อปรสิตและการแพร่กระจายในเมืองกวนตัน ประเทศมาเลเซีย

ความเป็นมาและวัตถุประสงค์: แมลงสาบถือเป็นศัตรูพืชในครัวเรือนที่น่ารังเกียจเนื่องจากมีลักษณะที่สามารถกินได้เกือบทุกอย่าง เชื่อกันว่าแมลงสาบเป็นพาหะทางกลของปรสิตหลายชนิด เนื่องจากแมลงที่ออกหากินเวลากลางคืนนี้เคลื่อนที่ตามอำเภอใจจากที่หนึ่งไปยังอีกที่หนึ่ง ความสามารถในการคลานเข้าไปในทุกซอกทุกมุมและรอยแยกสามารถทำให้มันจับเชื้อโรคและปรสิตต่างๆ ที่สามารถถ่ายทอดสู่มนุษย์ได้ การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อระบุปรสิตที่ดำเนินการโดยแมลงสาบจากแผงขายอาหารสองแห่งและร้านอาหารสองแห่งในเมืองอินเดรามาห์โกตา เมืองกวนตัน วัสดุและวิธีการ: แมลงสาบที่จับได้จากสายพันธุ์ Periplaneta อเมริกานา. เก็บตัวอย่างแมลงสาบโดยใช้กับดักพลาสติกและกับดักเหนียว ตัวอย่างถูกประมวลผลโดยใช้น้ำเกลือธรรมดาเพื่อให้ได้ปรสิต เขย่าสารละลายน้ำเกลือปกติกับแมลงสาบที่เพิ่งฆ่าใหม่อย่างแรง และสังเกตด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงเพื่อระบุการปรากฏตัวของปรสิต ผลลัพธ์: การระบุแมลงสาบพบว่าปรสิตที่พบส่วนใหญ่เป็นไร พบปรสิตอื่น ๆ ได้แก่ สตรองจิลอยด์ ไข่, สตรองจิลอยด์ ตัวอ่อนและ Ascaris ไข่. ไม่พบโปรโตซัวซีสต์ในตัวอย่างแมลงสาบทั้งหมดในการศึกษานี้ จำนวนของปรสิตที่มาจากแมลงสาบที่จับได้จากแผงลอยนั้นสูงกว่าเมื่อเปรียบเทียบกับจำนวนปรสิตจากแมลงสาบที่จับได้จากร้านอาหาร ระดับสุขอนามัยที่ต่ำที่แผงขายอาหารช่วยให้แมลงสาบเข้ามารบกวนที่แผงลอยได้ดีกว่าร้านอาหาร บทสรุป: ดังนั้นแมลงสาบจึงทำหน้าที่เป็นพาหะของเอนโดปาราไซต์และปรสิตภายนอก ผลจากการศึกษาครั้งนี้ชี้ให้เห็นว่ามาตรการป้องกันที่เหมาะสม เช่น การรักษาความสะอาดของแผงลอยและร้านอาหารสามารถป้องกันการรบกวนของแมลงสาบได้

Afzan Mat Yusof, 2018. การระบุแมลงสาบเป็นพาหะทางกลสำหรับการติดเชื้อปรสิตและการแพร่กระจายในกวนตัน ประเทศมาเลเซีย วารสารกีฏวิทยา 15: 143-148.

แมลงสาบเป็นแมลงที่พบได้ทั่วไปในอาคารที่มนุษย์สร้างขึ้น 1 . สภาพแวดล้อมที่อบอุ่นและชื้นโดยเฉพาะอย่างยิ่งในห้องครัว ห้องน้ำ ระบบระบายน้ำ และแม้แต่ท่อน้ำทิ้งเป็นที่อยู่อาศัยที่ดีที่สุดสำหรับแมลงสาบ สภาพของที่อยู่อาศัยของแมลงสาบยังเป็นสภาพแวดล้อมที่เหมาะสมมากสำหรับเชื้อโรค เช่น แบคทีเรียและปรสิต เชื่อกันว่า อินทรียฺวัตถุ และของเหลวที่ปล่อยลงสู่ที่ดังกล่าวดึงดูดแมลงสาบ 2 . ในขณะที่แมลงสาบคลานไปทั่วสถานที่ในเวลากลางคืน แมลงสาบอาจหยิบเชื้อโรคต่างๆ จากแหล่งที่อยู่อาศัยที่สกปรกและถูกส่งไปยังที่อื่น 3 . สถานการณ์ที่น่ากลัวที่สุดคือเมื่อแมลงสาบพาเชื้อโรคเข้าไปในสถานที่ให้บริการอาหาร เช่น ร้านอาหารและแผงลอย สถานที่ประกอบอาหารที่ไม่มีหลักสุขอนามัยที่ดีมักมีแมลงสาบระบาดเป็นจำนวนมาก เชื้อโรคจะถูกหยิบขึ้นมาในขณะที่แมลงสาบคลานไปทั่วสถานที่ เช่น จากแหล่งที่อยู่อาศัยที่สกปรก สามารถส่งผ่านและปนเปื้อนแหล่งอาหาร และยังปนเปื้อนภาชนะที่ใช้ในการเตรียมอาหารด้วย 4.

แมลงสาบที่พบมากที่สุดในที่อยู่อาศัยของมนุษย์คือแมลงสาบอเมริกัน (Periplaneta อเมริกานา) และแมลงสาบเยอรมัน (Blatta germanica) 1 . แมลงสาบชนิดนี้มักพบในเขตร้อนและกึ่งเขตร้อน 5 แมลงสาบอาศัยอยู่ตามอาคารต่างๆ เช่น บ้านเรือน โรงงาน โรงอาหาร และท่อระบายน้ำ แมลงศัตรูพืชในครัวเรือนเหล่านี้ชอบสภาพแวดล้อมที่ชื้นและอบอุ่นและมีแหล่งอาหารมากมาย แมลงสาบอเมริกัน (Periplaneta อเมริกานา) เป็นแมลงสาบทั่วไปที่ใหญ่ที่สุด 7 . โดยทั่วไป แมลงสาบกินเกือบทุกอย่างโดยเฉพาะผลิตภัณฑ์ที่เป็นแป้ง วัตถุเน่าเปื่อย สารอินทรีย์ และแม้แต่อุจจาระของมนุษย์ 6 . ในขณะที่แมลงสาบกินอุจจาระของมนุษย์ เชื้อโรคในลำไส้จากอุจจาระจะถูกเก็บสะสมไว้ในร่างกายของแมลงสาบและเชื้อโรคเหล่านี้สามารถถ่ายทอดสู่มนุษย์ได้ จากการศึกษาพบว่าเชื้อโรคในลำไส้หลายชนิดสามารถแยกได้จากแมลงสาบ 5 แบคทีเรียที่แยกได้คือ Escherichia coli, Staphylococcus เอสพีพี, ซัลโมเนลลา เอสพีพี และ ชิเกลลา เอสพีพี 5

ในบรรดาปรสิตที่สำคัญที่แมลงสาบเป็นพาหะคือไข่พยาธิ พยาธิที่มีความสำคัญทางการแพทย์ ได้แก่ พยาธิที่ส่งผ่านดิน ชนิดของหนอนที่แยกได้จากแมลงสาบ ได้แก่ แอสคาริส lumbricoides, สตรองจิลอยด์ สเตอร์โคราลิส และ Trichuris trichiura 8.9 . พยาธิเหล่านี้มีหน้าที่สร้างภาระปรสิตที่เรียกว่า helminthiases และอาจทำให้เกิดโรคร้ายแรงในมนุษย์ได้ 10 นอกจากไข่พยาธิแล้ว แมลงสาบยังทำหน้าที่เป็นพาหะสำหรับการแพร่กระจายของซีสต์โปรโตซัว 11 . Cryptosporidium เอสพีพี, Giardia เอสพีพี, Entamoeba histolytica และ Entamoeba coli พบได้ตามร่างกายของแมลงสาบและลำไส้ 11 โปรโตซัวในลำไส้สามารถทำให้เกิดโรคต่างๆ เช่น ท้องร่วง ขาดสารอาหาร และไม่สบายในลำไส้ 11 . ความชุกของปรสิตในลำไส้ของมนุษย์ เช่น ซีสต์โปรโตซัวที่เป็นพาหะของแมลงสาบนั้นสูงมาก เนื่องจากการจัดการด้านสุขอนามัยที่ไม่เหมาะสม 12

ในมาเลเซีย มีการศึกษาเกี่ยวกับแมลงสาบน้อยมาก หนึ่งในการศึกษาก่อนหน้านี้ได้ดำเนินการในสลังงอร์เพื่อระบุแบคทีเรียที่มีความสำคัญทางการแพทย์ที่ดำเนินการโดยแมลงสาบ การศึกษารายงานผลในเชิงบวกสำหรับแบคทีเรียเช่น ซัลโมเนลลา เอสพีพี, ชิเกลลา เอสพีพี และ Escheria coli แยกออกจากตัวแมลงสาบ 5. การศึกษาอื่นเกี่ยวกับระดับการระบาดของแมลงสาบในพื้นที่ที่อยู่อาศัยของมนุษย์ การศึกษาดำเนินการในปี 1997 ที่กรุงกัวลาลัมเปอร์เปิดเผยว่า Periplaneta เอสพีพี พบมากเมื่อเทียบกับแมลงสาบชนิดอื่นๆ ในถิ่นที่อยู่ของมนุษย์ 12 . ในขณะเดียวกันการศึกษาในพื้นที่ที่อยู่อาศัยใน Pulau Pinang เปิดเผยว่าแมลงสาบอเมริกัน (Periplaneta อเมริกานา) มีรายงานว่าเป็นพันธุ์เด่นที่จับได้ในเขตที่อยู่อาศัยของมนุษย์ 13 . จำนวนแมลงสาบที่จับได้ขึ้นอยู่กับระดับสุขาภิบาลของสถานที่สุ่มตัวอย่าง 13 . อย่างไรก็ตาม ไม่มีการศึกษาใดๆ เพื่อตรวจสอบการเกิดการติดเชื้อปรสิตในแมลงสาบ

ตามความรู้ของผู้เขียน ไม่มีการศึกษาอื่นใดในมาเลเซียเกี่ยวกับการส่งผ่านกลไกของปรสิตโดยแมลงสาบ ดังนั้น นี่เป็นการศึกษาครั้งแรกเพื่อระบุปรสิตที่เป็นพาหะของแมลงสาบจากร้านอาหารแผงขายอาหารสองแห่ง และอีกสองแห่งในอินเดรามาห์โกตา เมืองกวนตัน ผลการวิจัยนี้สามารถนำไปใช้ในการวางแผนความพยายามเชิงกลยุทธ์ในการควบคุมประชากรแมลงสาบในมาเลเซียซึ่งจะเป็นการเพิ่มการรับรู้เกี่ยวกับศักยภาพของแมลงสาบที่เป็นพาหะของปรสิตที่เป็นอันตราย

วัสดุและวิธีการ

สุ่มตัวอย่างแมลงสาบ: แมลงสาบทั้งหมด 176 ตัว (ตัวเต็มวัยและนางไม้) ถูกจับได้จากแผงขายอาหารสองแห่ง FS1 (3°49&rsquo20.874&rdquoN 103°18&rsquo15.772&rdquoE), FS2 (3°49&rsquo22.339&rdquoN 103°18&rsquo16.236&rd1&rdquoE&N สองรายการ (3°49&rsquo22.339&rdquoN 103°18&rsquo16.236&rd1&RquoE) 3°49&rsquo25.499&rdquoN 103°18&rsquo44.600&rdquoE) ในอินเดรามาห์โกตา กวนตัน จากแผงขายอาหาร แมลงสาบ 49 ตัวจับได้ที่ FS1 และแมลงสาบ 49 ตัวที่ FS2 ในขณะเดียวกัน จำนวนแมลงสาบที่จับได้ที่ร้านอาหารคือ 38 แมลงสาบจาก R1 และแมลงสาบอีก 40 ตัวจาก R2 พื้นที่สุ่มตัวอย่างในการศึกษาครั้งนี้ได้รับการคัดเลือกตามระดับสุขอนามัยของพื้นที่โดยรอบ แมลงสาบถูกจับโดยใช้กับดักพลาสติกและกับดักเหนียว กับดักถูกเหยื่อล่อและตั้งเวลา 8-12 ชั่วโมงทุกวันเป็นเวลา 4 เดือน เริ่มตั้งแต่เดือนพฤศจิกายน 2560 ถึงเดือนกุมภาพันธ์ 2561 โดยวางกับดักตั้งแต่เย็นเวลา 18.00 น. จนถึงเช้าเวลา 8.00 น. ตามสถานที่ต่างๆ ในสถานที่ที่เลือก สถานที่สำหรับวางกับดักอยู่ในที่มืดและชื้นภายในสถานที่โดยเฉพาะที่ห้องครัวและใต้อ่างล้างจาน แมลงสาบถูกแยกออกตามสถานที่รวบรวมซึ่งจับแมลงสาบเพื่อป้องกันการปนเปื้อนข้ามที่อาจรบกวนผลลัพธ์

การระบุชนิดของแมลงสาบ: แมลงสาบที่จับได้นั้นจำแนกตามสายพันธุ์ได้จากลักษณะทางกายภาพและลักษณะเฉพาะ การระบุตัวตนทำได้โดยการสังเกตลักษณะที่ปรากฏตามเอกสารอ้างอิง แมลงสาบที่พบมากที่สุดในมาเลเซียมาจากสายพันธุ์ Periplaneta อเมริกานา 5 . ผู้ใหญ่ Periplaneta อเมริกานา มีลำตัวสีน้ำตาลแดง มีแถบสีน้ำตาลอมเหลืองที่ขอบของสรรพนาม ขนาดผู้ใหญ่ Periplaneta อเมริกานา ยาวประมาณ 3-4 ซม. ปีกยาวกว่าลำตัว ในขณะเดียวกันนางไม้ของ Periplaneta อเมริกานา มีลำตัวสีน้ำตาลแดง แต่ไม่มีปีก 14 . แมลงสาบอีกชนิดหนึ่งที่มักพบในมาเลเซียเรียกว่า แมลงสาบเยอรมัน หรือ Blatella germanica 5 . ขนาดของแมลงสาบเยอรมันอยู่ระหว่าง 1.1-1.6 ซม. ทำให้มีขนาดเล็กกว่าแมลงสาบอเมริกันมาก สีลำตัวเป็นสีน้ำตาลอ่อนถึงน้ำตาลเข้ม และมีเส้นริ้วสีเข้มสองเส้นขนานกันบน pronotum จนถึงโคนปีก 1,15 ในการศึกษานี้ แมลงสาบที่จับได้มาจาก Periplaneta อเมริกานา สายพันธุ์. ไม่มี Blatella germanica ระบุจากการสุ่มตัวอย่าง

การประมวลผลตัวอย่าง: ตัวอย่างถูกประมวลผลที่ห้องปฏิบัติการของ Central Research and Animal Facility (CREAM), Kulliyyah of Science, International Islamic University of Malaysia (IIUM), Kuantan แมลงสาบถูกใส่ลงในภาชนะที่มีอากาศถ่ายเทตามสถานที่รวบรวม สำลีชุบคลอโรฟอร์มและเติมลงในภาชนะที่มีอากาศถ่ายเทเพื่อทำให้แมลงสาบอ่อนตัวลงและฆ่าแมลงสาบ หลังจากแมลงสาบถูกฆ่าแล้ว พวกมันทั้งหมดจะถูกประมวลผลทันทีเพื่อสังเกตหาเชื้อโรคที่นำขึ้นสู่ผิวกาย วิธีการประมวลผลตัวอย่างเพื่อให้ได้เชื้อโรคจากร่างกายภายนอกของแมลงสาบถูกปรับเปลี่ยนเล็กน้อย 8,9 แมลงสาบแต่ละตัวถูกใส่ลงในหลอดที่เต็มไปด้วยน้ำเกลือปกติ 5 มล. และเขย่าอย่างแรงเป็นเวลา 2 นาที หลอดถูกหมุนเหวี่ยงที่อุณหภูมิต่ำกว่า 2000 รอบต่อนาที เป็นเวลา 5 นาที เก็บตะกอนที่สะสมโดยการหมุนเหวี่ยงโดยใช้ปิเปตและถ่ายโอนไปยังสไลด์แก้วเพื่อตรวจสอบด้วยกล้องจุลทรรศน์ การศึกษานี้เน้นที่แมลงสาบเป็นพาหะทางกลสำหรับปรสิตแทนที่จะเป็นพาหะทางชีววิทยา ดังนั้นการแยกปรสิตออกจากแมลงสาบจึงทำได้เฉพาะจากพื้นผิวภายนอกของแมลงสาบเท่านั้น

เทคนิคการย้อมสีและการตรวจด้วยกล้องจุลทรรศน์: ใช้เทคนิคการย้อมสีสองประเภทสำหรับการตรวจด้วยกล้องจุลทรรศน์ คือ โดยใช้ไอโอดีนของลูโกล 1% และการย้อมแบบเร่งกรด ไอโอดีนของ Lugol ถูกใช้เพื่อเพิ่มภาพลักษณ์ของหนอนพยาธิ ova 16 ตะกอนที่ได้จากการตกตะกอนโดยการหมุนเหวี่ยงถูกรวบรวมโดยใช้ปิเปตปาสเตอร์ที่ปราศจากเชื้อ ตะกอนหยดลงบนสไลด์ไมโครสโคป จากนั้นหยดไอโอดีนของ Lugol ลงบนสไลด์ ตะกอนและไอโอดีนของ Lugol ถูกผสมอย่างทั่วถึงโดยใช้ปิเปตปาสเตอร์ที่ปราศจากเชื้ออื่นก่อนที่จะปิดฝา สไลด์ถูกตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงภายใต้กำลังขยายรวม 100x และ 400x การย้อมสีด้วยกรดอย่างรวดเร็วหรือการย้อมสี Ziehl-Neelsen ที่ดัดแปลงถูกใช้ในการทดลองนี้เพื่อสังเกตปรสิต coccidian 17 ตะกอนหยดลงบนสไลด์เพื่อให้อากาศแห้ง สารละลายคาร์โบลฟูชซินถูกน้ำท่วมบนสไลด์และทำให้ร้อนเล็กน้อย ปล่อยให้คาร์โบล ฟูชซินย้อมสไลด์เป็นเวลา 5 นาที ก่อนล้างด้วยน้ำกลั่น สไลด์ถูกเปลี่ยนสีโดยการแช่ในแอลกอฮอล์กรด 3% เป็นเวลา 30 วินาที จากนั้นล้างสไลด์ด้วยน้ำกลั่น ต่อมาจึงทาสีสไลเดอร์ด้วยการจุ่มลงในสีเขียวมาลาไคต์ประมาณ 1 นาที ต่อมาล้างสไลด์ด้วยน้ำกลั่นแล้วปล่อยให้แห้ง สไลด์ถูกตรวจสอบโดยใช้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง

ความชุกของแมลงสาบที่เป็นพาหะนำโรคที่จับได้จากร้านอาหาร 2 แห่งและแผงขายอาหาร 2 แห่งในเมืองอินเดรามาห์โกตา กวนตัน: ตารางที่ 1 แสดงจำนวนแมลงสาบทั้งหมดและจำนวนแมลงสาบที่อาศัยปรสิตบนผิวกาย จำนวนแมลงสาบที่มีปรสิตอยู่บนพื้นผิวร่างกายมากที่สุดคือแมลงสาบที่จับได้ที่ FS1 เปอร์เซ็นต์ของแมลงสาบที่อยู่อาศัยปรสิตคือสูงสุดที่ FS1 (83.67%) ตามด้วย FS2 (73.47%) R2 (40.00) และสุดท้าย R1 (23.68%)

ความชุกของปรสิตที่พบในร่างกายของแมลงสาบ: ข้อมูลในตารางที่ 2 แสดงชนิดของปรสิตที่แมลงสาบจับที่บริเวณเก็บตัวอย่างในอินเดรามาห์โกตา กวนตัน ไซต์สุ่มตัวอย่างแต่ละแห่งมีผลบวกต่อไร ไข่พยาธิต่างๆ ถูกระบุจากผิวกายของแมลงสาบที่จับได้ที่ R1, FS1 และ FS2 สตรองจิลอยด์ เอสพีพี พบไข่ในตัวอย่างแมลงสาบจาก R1 และ FS1 ในขณะเดียวกันตัวอ่อนไส้เดือนฝอยของ สตรองจิลอยด์ เอสพีพี พบในตัวอย่างแมลงสาบที่เก็บที่ FS1 ในขณะเดียวกัน, Ascaris เอสพีพี พบไข่ในตัวอย่างแมลงสาบที่เก็บที่ FS2 มีเพียงตัวอย่างแมลงสาบจาก R2 เท่านั้นที่มีไรและไข่พยาธิและตัวอ่อนเป็นลบ ไม่พบโปรโตซัวซีสต์ในตัวอย่างแมลงสาบทั้งหมดที่เก็บรวบรวมในอินเดรามาห์โกตา กวนตัน

ในการศึกษานี้ ตัวอย่างแมลงสาบที่เก็บจากแหล่งอาหารหลายแห่งในอินเดรามาห์โกตา กวนตัน มีผลบวกต่อปรสิตในลำไส้รวมทั้งหนอนพยาธิ (สตรองจิลอยด์ สเตอร์โคราลิส, แอสคาริส lumbricoides และพยาธิปากขอ) และปรสิตภายนอก (ไร) ในขณะเดียวกันร่างกายภายนอกของแมลงสาบก็มีผลเสียกับปรสิตโปรโตซัว การศึกษานี้คาดการณ์ไว้อย่างยิ่งว่าการเกิดขึ้นของ สตรองจิลอยด์ สเตอร์โคราลิส, แอสคาริส lumbricoides และพยาธิปากขออาจเป็นเพราะผนังไข่หนา ทำให้เกิดการต้านทานและอายุขัยของแมลงสาบได้ยาวนาน ในขณะเดียวกัน การเกิดปรสิตโปรโตซัวในเชิงลบอาจเป็นเพราะความหนาของผนังของโปรโตซัวซีสต์ที่อาจต้านทานไม่เพียงพอที่จะอยู่รอดต่อสิ่งแวดล้อมในพื้นที่ศึกษานี้ นอกจากนี้ยังยืนยันการวิจัยก่อนหน้านี้เกี่ยวกับพยาธิว่าเป็นปรสิตในลำไส้ที่แพร่หลายมากขึ้นเมื่อเทียบกับการอยู่รอดของปรสิตโปรโตซัวในแมลงสาบเนื่องจากความหนาของผนังไข่ของหนอนพยาธิ 18

นอกจากนี้ยังไม่พบโปรโตซัวซีสต์ในลำไส้ที่อาจเกิดจากระดับสุขาภิบาลที่แตกต่างกันในพื้นที่ศึกษาโดยรอบ การค้นพบนี้สอดคล้องกับการศึกษาที่ทำในพื้นที่สามเหลี่ยมปากแม่น้ำไนเจอร์ของไนจีเรีย ซึ่งจำนวนของหนอนพยาธิที่แยกได้จากแมลงสาบจะสูงขึ้นหากจับมาจากที่ไม่ถูกสุขลักษณะและสัมผัสกับดินที่ปนเปื้อนอุจจาระ 19 ระดับสุขอนามัยที่ต่ำกว่าบ่งชี้ว่าแมลงสาบมีโอกาสสัมผัสกับวัตถุปนเปื้อนมากขึ้น

ผลการวิจัยยังระบุด้วยว่าการกำจัดขยะที่ไม่ดีของร้านอาหารและร้านแผงลอยที่สังเกตพบในบริเวณนี้อาจมีส่วนทำให้เกิดการปนเปื้อนของหนอนพยาธิในร่างกายของแมลงสาบภายนอกเหล่านี้ ผลการวิจัยสอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้านี้ที่ทำโดย Morenikeji et al. 20 คนในรัฐโอโย ประเทศไนจีเรีย จากการศึกษาพบว่าแมลงสาบทั้งหมด 23 ตัวถูกพาหะนำโรคที่เรียกว่า สตรองจิลอยด์ สเตอร์โคราลิส, ฟลุ๊ค และ Enterobius vermicularis ภายนอก ไม่มีแมลงสาบภายนอกตัวใดที่เป็นบวกต่อโปรโตซัว ผู้เขียนระบุว่าความชุกของหนอนพยาธิที่สูงขึ้นอาจเกิดจากการกำจัดขยะในพื้นที่ศึกษาอย่างไม่เหมาะสม ดังนั้น นี่เป็นวิธีที่เป็นไปได้ที่แมลงสาบสามารถติดต่อกับปรสิตในลำไส้ของหนอนพยาธิได้

อย่างไรก็ตาม การศึกษานี้ตรงกันข้ามกับการศึกษาก่อนหน้านี้หลายครั้งที่สามารถระบุทั้งพยาธิและโปรโตซัวในแมลงสาบภายนอกได้ 21-23 ตัวอย่างเช่น การศึกษาโดยการค้นพบโดย El-Sherbini และ El-Sherbini พบว่า Entamoeba histolytica, บาแลนทิเดียม โคไล, แอสคาริส lumbricoides, Ancylostoma duodenale, Enterobius vermicularis, Trichuris trichuria และ สตรองจิลอยด์ สเตอร์โคราลิส จากแมลงสาบภายนอกในสถานประกอบการ 22 . แม้ว่าการศึกษานี้จะไม่สามารถเปิดเผยปรสิตโปรโตซัวใดๆ ได้ แต่การศึกษายืนยันกับข้อสรุปของผู้เขียนว่าแมลงสาบสามารถนำไปสู่การแพร่ของโรคปรสิตได้

สิ่งที่น่าสังเกตคือการปรากฏตัวของไรบนพื้นผิวภายนอกของแมลงสาบในร้านอาหารและแผงขายของในการศึกษานี้ แมลงสาบที่จับได้จากแผงขายอาหารมีไรมากกว่าแมลงสาบที่จับได้จากร้านอาหาร อาจเป็นเพราะสภาพแวดล้อมโดยรอบของแผงขายอาหารมีความชื้นและสกปรกซึ่งเป็นที่อยู่อาศัยที่ดีสำหรับไรและแมลงสาบ การปรากฏตัวของไรบนพื้นผิวภายนอกของแมลงสาบอาจปรากฏขึ้นเมื่อแมลงสาบคลานไปทั่วทุกแห่ง ไรฝุ่นสามารถเจริญเติบโตได้ในทุกครัวเรือน พื้นที่ปกคลุม เช่น ใต้เครื่องเรือนที่มีฝุ่นมากเป็นที่อยู่อาศัยของไรฝุ่น 14,24 ตัว เนื่องจากบริเวณที่ปกคลุมยังสามารถป้องกันแมลงสาบได้ด้วย จึงเป็นไปได้ที่แมลงสาบจะหยิบขึ้นมาได้ เนื่องจากแมลงสาบซ่อนตัวอยู่ในที่มืดและชื้นในตอนกลางวัน

โดยรวมแล้ว ข้อจำกัดของการศึกษานี้คือการระบุตัวตนโดยอาศัยการย้อมสีและกล้องจุลทรรศน์โดยตรงเพื่อระบุปรสิตบนแมลงสาบภายนอกเท่านั้น ด้วยการผสมผสานการวิเคราะห์ระดับโมเลกุล การระบุปรสิตได้แม่นยำและเชื่อถือได้มากขึ้น ดังนั้นในอนาคตจึงแนะนำให้ศึกษาคุณลักษณะทางพันธุกรรมของการปนเปื้อนปรสิตในแมลงสาบภายนอก

แมลงสาบทำหน้าที่เป็นพาหะทางกลสำหรับปรสิตในลำไส้และปรสิตภายนอกโดยเฉพาะไร ปรสิตในลำไส้ เช่น ตัวอ่อนของหนอนพยาธิและไข่พยาธิสามารถระบุได้โดยใช้เทคนิคกล้องจุลทรรศน์ ดังนั้นสิ่งที่ค้นพบจากการศึกษาครั้งนี้หวังว่าจะสามารถเผยแพร่ความตระหนักให้กับเจ้าของสถานที่ประกอบอาหารเพื่อต่อสู้กับแมลงสาบโดยการเพิ่มระดับสุขาภิบาลของบริเวณโดยรอบ

ข้อความแสดงความสำคัญ

การศึกษานี้แสดงความสามารถของแมลงสาบทำหน้าที่เป็นพาหะทางกลสำหรับ entero และ ectoparasites จากการศึกษานี้ สิ่งสำคัญที่ควรทราบในการแก้ปัญหาระดับสุขาภิบาลโดยเฉพาะอย่างยิ่งในสถานประกอบอาหาร เพื่อหลีกเลี่ยงโรคที่เกิดจากอาหารที่เกี่ยวข้องกับการติดเชื้อปรสิตและการรบกวนที่เกิดจากแมลงสาบ

ผู้เขียนขอขอบคุณเจ้าของและคนงานร้านอาหารและแผงขายอาหารสำหรับความร่วมมือเป็นอย่างดีตลอดระยะเวลาที่ทำการศึกษา สำหรับงานวิจัยนี้ แหล่งทุนมาจาก International Islamic University Malaysia ภายใต้ IIUM Research Initiative Grants Scheme Foundation Project (RIGS) เลขที่ 16-301-0465

2: Isaac, C. , ป.ณ. โอรู, เอ็ม.ไอ. อิยามุ, เจ.ไอ. Ehiaghe and O. Isaac, 2014. การวิเคราะห์เปรียบเทียบสิ่งมีชีวิตที่ทำให้เกิดโรคในแมลงสาบจากชุมชนต่างๆ ในรัฐเอโดะ ประเทศไนจีเรีย เกาหลี เจ. พาราซิทอล., 52: 177-181.
CrossRef | ลิงค์ตรง |

3: Etim, SE, O.E. โอเคร ป. อัคปาน, G.I. อุกปง และ อี.อี. โอคุ, 2556. ความชุกของแมลงสาบ (Periplanata Americana) ในครัวเรือนใน Calabar: ผลกระทบด้านสาธารณสุข. เจ. ระบาดวิทยาสาธารณสุข, 5: 149-152.
ลิงค์ตรง |

4: Malik, K. , A. Jamil และ A. Arshad, 2013. การศึกษาจุลินทรีย์ที่ทำให้เกิดโรคในส่วนภายนอกร่างกายของแมลงสาบอเมริกัน (Periplaneta อเมริกานา) รวบรวมจากครัวต่างๆ IOSR เจ. ฟาร์ม. ไบโอล. วิทย์, 7: 45-48.
ลิงค์ตรง |

5: Wahab, AH, M.P.M. Tahir and E. Mohamed, 2016. แบคทีเรียก่อโรคที่แยกได้จากแมลงสาบที่พบในสถานที่ประกอบอาหาร เจ. เทคโนล, 78: 73-77.
ลิงค์ตรง |

6: Filingeri, D., 2014. ความรู้สึกชื้น, แมลงสาบ, หนอนและมนุษย์: กลไกทางประสาทสัมผัสทั่วไปสำหรับความชุ่มชื้นร่วมกันข้ามสายพันธุ์หรือไม่? เจ. Neurophysiol., 114: 763-767.
CrossRef | ลิงค์ตรง |

7: Beccaloni, G., 2014. ไฟล์แมลงสาบออนไลน์ เวอร์ชัน 5.0/5.0 สิ่งพิมพ์อิเล็กทรอนิกส์เวิลด์ไวด์เว็บ http://cockroach.speciesfile.org/HomePage/Cockroach/HomePage.aspx

8: Hamu, H. , S. Debalke, E. Zemene, B. Birlie, Z. Mekonnen และ D. Yewhalaw, 2014. การแยกปรสิตในลำไส้ที่มีความสำคัญต่อสุขภาพของประชาชนจากแมลงสาบ (Blattella germanica) ในเมืองจิมมา ทางตะวันตกเฉียงใต้ของเอธิโอเปีย เจ. พาราซิทอล. Res. ฉบับที่ 2014. 10.1155/2014/186240

9: Ejimadu, L.C. , O.N. โกเซล, วาย.เอ็ม. Ahmadu และ N.N. James-Rugu, 2015. ความเชี่ยวชาญของ Periplaneta Americana (แมลงสาบอเมริกัน) และ Blattella germanica (แมลงสาบเยอรมัน) ต่อปรสิตในลำไส้ : ปัญหาด้านสาธารณสุข เจ. ฟาร์ม. ไบโอล. วิทย์, 10: 23-32.
ลิงค์ตรง |

10: Tatang, R.J.A., H.G. Tsila และ J.W. Pone, 2017. ปรสิตที่สำคัญทางการแพทย์เป็นพาหะของแมลงสาบในเขต Melong, Littoral, Cameroon เจ. พาราซิทอล. Res. ฉบับที่ 2017. 10.1155/2017/7967325

11: Adenusi, AA, M.I. Akinyemi and D. Akinsanya, 2018. แมลงสาบในครัวเรือนเป็นพาหะของปรสิตในลำไส้ของมนุษย์ในลากอสเมโทรโพลิสทางตะวันตกเฉียงใต้ของไนจีเรีย: ผลกระทบต่อสุขภาพของประชาชน J. Arthropod-Borne Dis., 12: 141-151.
CrossRef | ลิงค์ตรง |

12: Vytilingam, I. , J. Jeffery, P. Oothuman, A.R. Abdul and A. Sulaiman, 1997. แมลงสาบจากบ้านมนุษย์ในเมือง: การแยกตัวของแบคทีเรียก่อโรคและการควบคุม. เอเชียตะวันออกเฉียงใต้ เจ. ทรอป. เมดิ. สาธารณสุข 28 : 218-222.
PubMed |

13: Tatfeng, Y.M. , M.U. อุซวนเลเล่, อ. อุรุกเพ, อ.เค. Digban, M. Okodua, F. Oviasogie และ A.A. Turay, 2005. การถ่ายทอดทางกลไกของสิ่งมีชีวิตที่ทำให้เกิดโรค: บทบาทของแมลงสาบ. เจ. เวกเตอร์ Dis., 42: 129-134.
PubMed | ลิงค์ตรง |

14: Berenbaum, M.R. , 1996. แมลงในระบบ: แมลงและผลกระทบต่อกิจการของมนุษย์ 1st Edn., Basic Books, New York, ISBN-13: 978-0201408249, หน้า: 400

15: Jacobs, S. , 2013. แมลงสาบเยอรมัน. ส่วนขยายรัฐเพนซิลเวเนีย มหาวิทยาลัยแห่งรัฐเพนซิลเวเนีย https://ento.psu.edu/extension/factsheets/german-cockroaches

16: Cheesbrough, M., 2006. District Laboratory Practice in Tropical Countries, Part 2 2nd Eds., Cambridge University Press, Cambridge, ISBN: 9780521676311, หน้า: 440.


พาหะนำโรคและโรคที่เกี่ยวข้อง

ดร.เฟรดรอส โอคูมู เป็นผู้อำนวยการด้านวิทยาศาสตร์ที่ Ifakara Health Institute และผู้ช่วยศาสตราจารย์ที่ Nelson Mandela African Institute of Science & Technology ประเทศแทนซาเนีย เขาเป็นนักชีววิทยาด้านยุงและผู้เชี่ยวชาญด้านสาธารณสุขที่ทำงานเกี่ยวกับแนวทางที่ยั่งยืนสำหรับการเฝ้าระวัง ป้องกัน และควบคุมโรคที่เกิดจากพาหะนำโรค เขายังหลงใหลในการปรับปรุงระบบนิเวศสำหรับนักวิจัยรุ่นเยาว์ในแอฟริกา ผลงานของเขาได้รับการตีพิมพ์ในระดับสากลในวารสารทางวิทยาศาสตร์อันทรงเกียรติหลายฉบับ เขาทวีต @Fredros_Inc และบางครั้งก็เขียนโพสต์สำหรับบล็อก Malaria World

ดร.มาร์โค ปอมบิ เป็นผู้ช่วยศาสตราจารย์ด้านปรสิตวิทยาที่ Sapienza University of Rome ประเทศอิตาลี ในฐานะนักกีฏวิทยาทางการแพทย์ เขาได้ทำงานอย่างกว้างขวางในประเทศที่มีเชื้อมาลาเรียเฉพาะถิ่น สำรวจแง่มุมต่างๆ ของชีววิทยาเวกเตอร์ ตั้งแต่ชีววิทยาวิวัฒนาการ speciation และพันธุกรรมของยุง ไปจนถึงนิเวศวิทยาและพฤติกรรมที่เกี่ยวข้องกับบทบาทของพาหะนำโรค He has been developing new sampling methods for surveillance, monitoring and control of disease vectors.


Mechanical stretch exacerbates the cell death in SH-SY5Y cells exposed to paraquat: mitochondrial dysfunction and oxidative stress

Recent studies suggest that traumatic brain injury (TBI) and pesticide exposure increase the risk of Parkinson's disease (PD), but the molecular mechanisms involved remain unclear. Using an in vitro model of TBI, we evaluated the role of mitochondrial membrane potential (ΔΨm) and mitochondrial reactive oxygen species (ROS) induced by stretch on dopaminergic cell death upon paraquat exposure. Human dopaminergic neuroblastoma SH-SY5Y cells grown on silicone membrane were stretched at mild (25%) and moderate (50%) strain prior to paraquat exposure. We observed that moderate stretch (50% strain) increased the vulnerability of cells to paraquat demonstrated by the loss of plasma membrane integrity (propidium iodide-uptake) and decreased mitochondrial activity (MTT assay). Mitochondrial depolarization occurred immediately after stretch, while mitochondrial ROS increased rapidly and remained elevated for up to 4h after the stretch injury. Intracellular glutathione (GSH) stores were also transiently decreased immediately after moderate stretch. Cells treated with paraquat, or moderate stretch exhibited negligible mitochondrial depolarization at 48h post treatment, whereas in cells stretched prior to paraquat exposure, a significant mitochondrial depolarization occurred compared to samples exposed to either paraquat or stretch. Moderate stretch also increased mitochondrial ROS formation, as well as exacerbated intracellular GSH loss induced by paraquat. Overexpression of manganese superoxide dismutase (MnSOD) markedly diminished the deleterious effects of stretch in paraquat neurotoxicity. Our findings demonstrate that oxidative stress induced by mitochondrial dysfunction plays a critical role in the synergistic toxic effects of stretch (TBI) and pesticide exposure. Mitigation of oxidative stress via mitochondria-targeted antioxidants appears an attractive route for treatment of neurodegeneration mediated by TBI.

คำสำคัญ: Mitochondria MnSOD Paraquat Reactive oxygen species Traumatic brain injury.

แถลงการณ์ความขัดแย้งทางผลประโยชน์

แถลงการณ์ความขัดแย้งทางผลประโยชน์

The authors declare that there are no conflicts of interest.

ตัวเลข

Main components of the cell…

Main components of the cell stretching device: 1) a top plate with glass…

Figure 2. Effect of stretch on SH-SY5Y…

Figure 2. Effect of stretch on SH-SY5Y cell survival/death in the presence of paraquat (PQ)

Figure 3. Effect of stretch on ΔΨm

Figure 3. Effect of stretch on ΔΨm

Cells were subject to the indicated strain levels.…

Figure 4. Time course of mitochondrial ROS…

Figure 4. Time course of mitochondrial ROS generation and intracellular GSH levels in SH-SY5Y cells…

Figure 5. Effect of stretch on ΔΨm…

Figure 5. Effect of stretch on ΔΨm of SH-SY5Y cells in the presence or absence…

Figure 6. Effect of stretch on mitochondrial…

Figure 6. Effect of stretch on mitochondrial ROS and intracellular GSH levels in SH-SY5Y cells…

Figure 7. Effect of MnSOD overexpression on…

Figure 7. Effect of MnSOD overexpression on paraquat induced cytotoxicity following stretch injury


Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases (CRPVBD) is a new primary research, gold open access journal from Elsevier. CRPVBD publishes Original Research articles, Short Communications, Letters, Opinion and Methodology articles as well as Reviews, Rapid Reviews and Graphical Reviews.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases (CRPVBD) is a new primary research, gold open access journal from Elsevier. CRPVBD publishes Original Research articles, Short Communications, Letters, Opinion and Methodology articles as well as Reviews, Rapid Reviews and Graphical Reviews, that cover all aspects of human and animal parasitology และ vector biology and vector-borne pathogens.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases is a peer-reviewed gold open access (OA) journal and upon acceptance all articles are permanently and freely available. It is part of the Current Opinion and Research (CO+RE) suite of journals. All CO+RE journals leverage the Current Opinion legacy of editorial excellence, high-impact, and global reach, to ensure they are a widely read resource.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases main research areas covered include (but are not restricted to):

  • Diversity, distribution, ecology, life cycles and transmission biology of parasites and arthropod vectors.
  • Identification, taxonomy, systematics and molecular phylogenetics of parasites and arthropod vectors.
  • Surveillance of indigenous and invasive arthropod vectors of public and veterinary health relevance: distribution, abundance and bionomics. Assessment of vector-pathogen relationships and the risk of pathogen transmission and associated disease.
  • Mathematical modelling of parasite and vector populations, parasitic infections, host-parasite and vector-pathogen interactions, and epidemiology of zoonotic and emerging/re-emerging infectious diseases.
  • Impact of environmental change on the transmission dynamics of parasites and the biology, ecology and distribution of intermediate hosts and vectors. Emergence, re(emergence) and globalisation of vectors, pathogens and hosts and One Health.
  • Parasitic and vector-borne diseases of humans, wildlife and domestic, farm and companion animals including studies on immunology, immunopathology, diagnosis and control.
  • Neglected tropical diseases (NTDs): diagnosis, monitoring, control and eradication/elimination. Model-based analyses addressing the transmission dynamics and control of Chagas disease, visceral leishmaniasis, human African trypanosomiasis, soil-transmitted helminths, schistosomiasis, lymphatic filariasis, onchocerciasis and trachoma.
  • Molecular aspects of parasite and vector diversity and evolution including molecular epidemiology and population genetics mechanisms of anti-parasite drug resistance and insecticide resistance in arthropod vectors.
  • Use of genomics, proteomics and bioinformatics technologies to study host-parasite/pathogen and parasite-host-microbiota interactions, and pathogen-microbiome interaction in vectors.
  • Economic impact assessments of parasitic infections or vector-borne diseases.
  • Outbreak investigations and impact assessments.

Topics which may be considered for the journal only if the following requirements are met:

  • Studies assessing prevalence rates of parasites and pathogens in arthropod vectors (ticks, mosquitoes, sand flies) that are ไม่ restricted to local or small regional scales และ address gaps in large-scale temporal and/or spatial patterns of host-parasite and arthropod-pathogen systems.
  • Major reviews of the systematics and taxonomy of parasites and arthropod vectors that provide a novel background in the field.
  • Assessment of novel chemicals (attractants, adulticides of larvicides) if at an advanced stage with extensive laboratory data and chemical analysis to characterize active ingredients และ field data on efficacy and biosafety.
  • Clinical trial studies if these include mechanistic insight into intervention efficacy from parasitology and/or vector data.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases builds on Elsevier's reputation for excellence in scientific publishing and long-standing commitment to communicating reproducible biomedical research targeted at improving human health.


Cationic Lipid Transfection

Specially designed cationic lipids facilitate DNA & siRNA delivery into cells.

Electroporation

Mechanical transfection that electrical pulses to create temporary pores in cell membranes.

ใน Vivo Transfection

Effective & easy-to-use ในร่างกาย RNAi delivery reagents used to achieve phenotypic alternations in animals.

Cotransfection

Simultaneous transfection of 2 separate nucleic acid molecules.

RNAi & siRNA Transfection

Reverse transfect Invitrogen Stealth RNAi or siRNA into mammalian cells in a 24-well format

Transient Transfection

Rapid, scalable, high-yield protein production from transiently transfected suspension cultures.

Stable Transfection

Stable transfection introduces DNA into cells long-term and pass the introduced DNA to their progeny.

Calcium Phosphate Transfection

Reagents to enable the introduction of DNA into eukaryotic cells via calcium phosphate co-precipitation.

CRISPR transfection

We have optimized protocols to achieve high cleavage efficiency and ease of delivery.


ตัวเลือกการเข้าถึง

เข้าถึงวารสารฉบับเต็มเป็นเวลา 1 ปี

ราคาทั้งหมดเป็นราคาสุทธิ
ภาษีมูลค่าเพิ่มจะถูกเพิ่มในภายหลังในการชำระเงิน
การคำนวณภาษีจะสิ้นสุดในขั้นตอนการชำระเงิน

รับสิทธิ์เข้าถึงบทความแบบจำกัดเวลาหรือแบบเต็มบน ReadCube

ราคาทั้งหมดเป็นราคาสุทธิ


What Are the Applications of Vectors?

Because they are easy to generalize to multiple different topics and fields of study, vectors have a very large array of applications. Vectors are regularly used in the fields of engineering, structural analysis, navigation, physics and mathematics. They are also used on a case-by-case basis to model out different problems and scenarios mathematically.

Vectors are mathematical constructs that include a length and a direction. They can exist in any number of dimensions. Because of this, they are used to simply yet effectively convey information about objects or situations. One of the most common uses of vectors is in the description of velocity. By using vectors, physicists describe the movement of a car in motion using a simple line on a geometric plane. This same principle is also applied by navigators to chart the movements of airplanes and ships.

Vectors are also used to plot trajectories. The movements of any thrown object, such as a football, can be mapped with vectors. Using multiple vectors allows for the creation of a model that encompasses external forces like the wind. By utilizing vector addition on these different forces, mathematicians create an accurate estimate of the path of motion and distance traveled by the object.