ข้อมูล

ไมโครโฟนสามารถตรวจจับยุงได้ในระยะสูงสุดเท่าใด

ไมโครโฟนสามารถตรวจจับยุงได้ในระยะสูงสุดเท่าใด


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

แค่สงสัยว่าเมื่อยุงโจมตีตอนกลางคืนฉันได้ยินมันรอบหัวไหล่ส่วนบน มีสถิติว่าหูหรือไมโครโฟนของเราสามารถตรวจจับได้ไกลแค่ไหนว่าอยู่ใกล้แค่ไหน?


ตามบทความ การใช้โทรศัพท์มือถือเป็นเซ็นเซอร์เสียงสำหรับการเฝ้าระวังยุงปริมาณมาก ไมโครโฟนของโทรศัพท์มือถือสามารถตรวจจับมอสซิโตสได้ในระยะ 10 ถึง 100 มม. (ขึ้นอยู่กับรุ่น) ในห้องว่างสามารถตรวจพบยุงได้ประมาณ 3 ม. (ระดับความดันเสียง)


ประเด็นปัจจุบัน

ชนิดพันธุ์รุกราน/การแพร่กระจายทั่วโลก

ยุงลาย albopictus ได้ผ่านการขยายตัวไปทั่วโลกอย่างมากจากกิจกรรมของมนุษย์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งการเคลื่อนย้ายยางรถยนต์ใช้แล้วและ “ไผ่นำโชค” [1] ร่วมกับการคมนาคมแบบพาสซีฟทั้งภาครัฐและเอกชน ส่งผลให้มีการแพร่ระบาดไปทั่วโลกของ เอ๋. อัลโบปิกตัส. ปัจจุบันได้รับการจัดอันดับให้เป็นหนึ่งใน 100 สายพันธุ์ที่รุกรานโดย Invasive Species Specialist Group [2]

ความเป็นพลาสติกเชิงนิเวศ

ความสำเร็จของการรุกรานของ เอ๋. อัลโบปิกตัส เกิดจากปัจจัยหลายประการ ได้แก่ ความยืดหยุ่นของระบบนิเวศ ความสามารถในการแข่งขันที่แข็งแกร่ง โลกาภิวัตน์ เช่น การค้าและการเดินทางที่เพิ่มขึ้น การขาดการเฝ้าระวัง และการขาดการควบคุมที่มีประสิทธิภาพ [1] การคาดการณ์การเปลี่ยนแปลงสภาพภูมิอากาศแนะนำ เอ๋. อัลโบปิกตัส จะยังคงเป็นสายพันธุ์รุกรานที่ประสบความสำเร็จซึ่งจะขยายออกไปเกินขอบเขตทางภูมิศาสตร์ในปัจจุบัน [3-5] ยุงตัวนี้กำลังแสดงสัญญาณของการปรับตัวให้เข้ากับสภาพอากาศที่หนาวเย็น [1,6] ซึ่งอาจส่งผลให้เกิดการแพร่กระจายของโรคในพื้นที่ใหม่

กัดกินเสี่ยงโรค

ยุงลาย albopictus ฟีดบนโฮสต์ที่หลากหลาย เป็นที่ทราบกันดีอยู่แล้วว่าเป็นสิ่งที่สร้างความรำคาญอย่างมาก โดยมีความเป็นไปได้ที่จะกลายเป็นภัยคุกคามต่อสุขภาพอย่างร้ายแรงในฐานะพาหะนำโรคจากสัตว์สู่คนในมนุษย์ [7] ยุงชนิดนี้เป็นพาหะของไวรัสชิคุนกุนยา ไวรัสเด็งกี่ และโรคไดโรฟิลาอาซิส ไวรัสอื่นๆ จำนวนหนึ่งที่ส่งผลกระทบต่อสุขภาพของมนุษย์ก็ถูกแยกออกจากการเก็บภาคสนามเช่นกัน เอ๋. อัลโบปิกตัส ในประเทศต่างๆ นอกจากนี้ การมีส่วนร่วมล่าสุดในการแพร่ระบาดของไวรัสชิคุนกุนยาในอิตาลี [8] และฝรั่งเศส [9,10] และไวรัสเด็งกี่ในฝรั่งเศส [11-13] และโครเอเชีย [14] เน้นย้ำถึงความสำคัญของการตรวจสอบสายพันธุ์ที่รุกรานเหล่านี้


สรุปผู้เขียน

ไวรัสที่เกิดจากอาร์โทรพอด (arboviruses) ทำให้เกิดภาระโรคสูงในมนุษย์และสัตว์ ไวรัสซิกา (ZIKV) ทำให้เกิด microcephaly และ Guillain-Barré syndrome ในมนุษย์ ในขณะที่ไวรัส Usutu (USUV) ทำให้เกิดการตายสูงในนกและโรคทางระบบประสาทในมนุษย์ การแพร่กระจายของ arboviruses เช่น ZIKV และ USUV นั้นพิจารณาจากการมีอยู่ของยุงที่สามารถถ่ายทอดไวรัสเหล่านี้จากโฮสต์ของสัตว์มีกระดูกสันหลังตัวหนึ่งไปยังอีกตัวหนึ่ง เราตรวจสอบความเสี่ยงของการแพร่กระจายของ ZIKV และ USUV โดยยุงพุ่มในเอเชีย ยุงลาย. ยุงตัวนี้กำลังบุกยุโรปและปัจจุบันมีอยู่ในเนเธอร์แลนด์ เราพบว่ามีการเก็บภาคสนาม เอ๋. japonicus ยุงสามารถส่งผ่าน ZIKV และ USUV ได้ จากยุงที่ติดเชื้อทางปาก 3% (ZIKV) และ 13% (USUV) แสดงน้ำลายที่เป็นไวรัสหลังจาก 14 วันที่ 28°C นอกจากนี้เรายังพบว่า ZIKV และ USUV กระตุ้นการตอบสนองภูมิคุ้มกันของไวรัส RNA ที่แทรกแซงของ เอ๋. japonicus. นอกจากนี้ สิ่งกีดขวางที่แข็งแรงในยุง midgut จำกัดการแพร่กระจายของไวรัส เนื่องจาก 96% (ZIKV) และ 88% (USUV) ของยุงที่ฉีด ZIKV หรือ USUV แสดงให้เห็นน้ำลายที่เป็นไวรัส นอกจากนี้เรายังค้นพบ narnavirus ใน เอ๋. japonicus. ระบุว่า เอ๋. japonicus สามารถส่ง ZIKV และ USUV ได้ เราควรพิจารณายุงตัวนี้ว่าเป็นพาหะนำโรคจากอาร์โบไวรัสในยุโรป

การอ้างอิง: Abbo SR, Visser TM, Wang H, Göertz GP, Fros JJ, Abma-Henkens MHC, และคณะ (2020) ยุงลายพุ่มในเอเชีย ยุงลาย พบในประเทศเนเธอร์แลนด์สามารถทดลองส่งไวรัสซิก้าและไวรัสอูซูตูได้ กรุณา Negl Trop Dis 14(4): e0008217. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0008217

บรรณาธิการ: Anna-Bella Failloux, Institut Pasteur, FRANCE

ได้รับ: 29 สิงหาคม 2019 ยอมรับ: 13 มีนาคม 2020 ที่ตีพิมพ์: 13 เมษายน 2020

ลิขสิทธิ์: © 2020 แอบโบ et al. นี่เป็นบทความการเข้าถึงแบบเปิดที่เผยแพร่ภายใต้เงื่อนไขของ Creative Commons Attribution License ซึ่งอนุญาตให้ใช้ แจกจ่าย และทำซ้ำได้ไม่จำกัดในสื่อใดๆ โดยต้องให้เครดิตผู้เขียนต้นฉบับและแหล่งที่มา

ความพร้อมใช้งานของข้อมูล: ข้อมูลที่เกี่ยวข้องทั้งหมดอยู่ในเอกสารหรือหาได้จากหมายเลขภาคยานุวัติของ NCBI ที่ให้มา (ลำดับจีโนม: MK984721, sRNA อ่านว่า: PRJNA545039)

เงินทุน: งานนี้ได้รับการสนับสนุนทางการเงินโดย ZonMW (โครงการ: ZikaRisk 'Risk of Zika Virus Introductions for the Netherlands', หมายเลขโครงการ: 522003001) และโดยโครงการวิจัยและนวัตกรรม Horizon 2020 ของสหภาพยุโรปผ่านโครงการ ZIKAlliance (ให้ข้อตกลงหมายเลข 734548) . Roy Hall ได้รับทุนสนับสนุนจากนักวิทยาศาสตร์ PE&RC Visiting Scientist ผู้ให้ทุนไม่มีบทบาทในการออกแบบการศึกษา การรวบรวมและวิเคราะห์ข้อมูล การตัดสินใจเผยแพร่ หรือการเตรียมต้นฉบับ

การแข่งขันความสนใจ: ผู้เขียนได้ประกาศว่าไม่มีผลประโยชน์ที่แข่งขันกัน


วัสดุและวิธีการ

การเก็บยุงและการแยกดีเอ็นเอ

เก็บยุงตัวเมียที่โตเต็มวัยจำนวน 2,500 ตัวจาก El-Nikhila, El-Matiaa, หมู่บ้าน Mankabad, Sahel Sleem, El-Badary, Dairout และ Manfalout District, Assiut Governorate ประเทศอียิปต์ ตลอด 22 เดือนโดยใช้เครื่องช่วยหายใจ [27] ตรวจพบยุงที่เก็บได้ [28-30] ยุงตัวเมียแบ่งออกเป็น 100 สระ (ยุงละ 25 ตัว) ตามสกุลและสถานที่รวบรวม ตัวอย่างสระว่ายน้ำทั้งหมดถูกติดฉลากและเก็บรักษาไว้ในตู้เย็นจนกว่าจะถูกใช้ การทดสอบ PCR สองประเภทได้ดำเนินการครั้งแรก PCR เดี่ยวสำหรับ Wolbachia ระบุด้วยมัลติเพล็กซ์ PCR สำหรับการตรวจจับพร้อมกันของ Wolbachia, W. bancrofti, ง. immitis, และ ง. รีเพน ภายในแหล่งรวมของยุงที่ระบุจากไซต์ที่รวบรวมตามลำดับ ไพรเมอร์โอลิโกนิวคลีโอไทด์ที่ใช้ทั้งหมดเป็นไพรเมอร์ไปข้างหน้าและย้อนกลับที่ได้รับจาก Metabion International AG (Martinsried, Germany) แยก DNA จีโนมออกจากยุงโดยใช้ชุดทิชชู่ Qiagen (QIAamp DNA Minikit, Hilden, Germany) โดยปฏิบัติตามคำแนะนำของผู้ผลิต

PCR เดี่ยวสำหรับ Wolbachia การตรวจจับ

Wolbachia ไพรเมอร์ที่ใช้คือ “Wolbachia 16S rDNA, W-Spec ไปข้างหน้า 5ʹ-CATACCTATTCGAAGGGATAG-3ʹ และ W-Spec ย้อนกลับ 5ʹ-AGCTTCGAGTGAAACCAATTC-3ʹ [31]

Perkin Elmer 480 Thermal Cycler (Perkin Elmer Cetus, Norwalk, Connecticut, USA) ใช้สำหรับการขยาย PCR ในสารผสมปฏิกิริยา 25 μl ซึ่งประกอบด้วย 0.5 mM ของไพรเมอร์แต่ละตัว, 0.6 mM ของ dNTP, 1 mM MgCl2, 1μl ของสารสกัดหยาบ DNA, 0.2 U ของ Taq polymerase, 2.5 μl ของ 10×PCR บัฟเฟอร์, และ 1 μl ของ DMSO ของผสมของปฏิกิริยาแต่ละชนิดถูกเคลือบด้วยน้ำมันแร่หนึ่งหยด PCR ถูกดำเนินการด้วยการเปลี่ยนสภาพเริ่มต้นที่ 94ⶬ เป็นเวลา 2 นาที, ตามด้วย 30 รอบซึ่งประกอบด้วย 94ⶬ เป็นเวลา 30 วินาที, 50.7ⶬ เป็นเวลา 1 นาที และ 72ⶬ เป็นเวลา 1 นาที และขยายครั้งสุดท้ายเป็นเวลา 4 นาทีที่ 72ⶬ. หลังจากทำ PCR แล้ว ผลิตภัณฑ์ PCR จำนวน 10μl แต่ละตัวถูกถ่ายภายใต้น้ำมันและผสมกับสีย้อมเจล 3 μl บรรจุบนเจล agarose 2% และนำไปอิเล็กโตรโฟรีซิส สนามไฟฟ้า (70 V) ถูกใช้เป็นเวลา 45 นาทีเพื่อเอาโมเลกุลดีเอ็นเอที่มีประจุลบออกผ่านทางเจลที่มีรูพรุน ชิ้นส่วนดีเอ็นเอถูกมองเห็นได้โดยการย้อมสีด้วยเอทิเดียมโบรไมด์ สีย้อมเรืองแสงนี้แทรกแซงระหว่างฐานของ DNA ในที่สุด ขนาดชิ้นส่วนที่สร้างโดย PCR ถูกมองเห็นเมื่อส่องสว่างด้วยแสงอัลตราไวโอเลต แถบ DNA ถูกเปรียบเทียบกับเครื่องหมายแสดงน้ำหนักโมเลกุลที่วิ่งเคียงข้าง (บันได DNA 100 bp, Promega, Madison, Wisconsin, USA) นำเจลไปแช่ในน้ำประปา (เป็นเวลา 15 นาที) จากนั้นจึงถ่ายภาพ

Multiplex PCR สำหรับการตรวจจับ . พร้อมกัน Wolbachia และพยาธิไส้เดือน

พูลบวก “โดย PCR เดี่ยวสำหรับ Wolbachiaตรวจสอบโดย multiplex PCR โดยใช้ Qiagen Multiplex PCR kit (Qiagen) โดยปฏิบัติตามคำแนะนำของผู้ผลิต

W. bancrofti ไพรเมอร์คือไพรเมอร์ ispWb12 forward primer 5ʹ-CTGA GTGAAATCAATGAACTGC-3ʹ และ reverse primer pWb12 R 5ʹ- GT CCATCCGATGAAGTTCCACC-3ʹ ไพรเมอร์ [32]

ไพรเมอร์ที่ใช้สำหรับ ง. immitis คือ DI COI-F1 5 ไปข้างหน้า 5ʹ-AGTGTAGAGGGTCAGCCTGAGTTA-3ʹ และ DI COI-R1 แบบย้อนกลับ 5ʹ-ACAGGCACTGACAATACCAAT-3ʹ ง. รีเพน ไพรเมอร์คือ Dr ITS2-F (5ʹ-CATTGATAGTTTA-CATTC AAATAA-3ʹ) ไปข้างหน้าและ Dr ITS2-R (5ʹ-GATTCATTTATTGC ATTA-AGCAAGC-3ʹ) [33]

ขั้นตอนการทำมัลติเพล็กซ์ PCR มีดังนี้ 2x QIAGEN Multiplex PCR Master Mix, แม่แบบ DNA, น้ำ RNasefree และส่วนผสมไพรเมอร์ถูกละลายน้ำแข็ง สารละลายถูกผสมอย่างสมบูรณ์ก่อนใช้งาน ส่วนประกอบ Multiplex PCR รวมส่วนผสมของปฏิกิริยาและแม่แบบ DNA ส่วนผสมของปฏิกิริยา (ปริมาตรรวม 50 μl/ปฏิกิริยา) ถูกเตรียมดังนี้: 25 μl 2x QIAGEN มัลติเพล็กซ์ PCR มาสเตอร์มิกซ์, 5 μl (ส่วนผสมไพรเมอร์ 10 เท่า, 2 μM ของแต่ละไพรเมอร์) และปริมาตรที่แปรผันได้ ของน้ำที่ปราศจาก RNase ของผสมของปฏิกิริยาถูกผสมอย่างทั่วถึงและปริมาตรที่เหมาะสมถูกจ่ายลงในหลอด PCR ดีเอ็นเอแม่แบบ (ปฏิกิริยา 1 μg/50 μl) ถูกเติมไปยังหลอด PCR แต่ละหลอดที่มีส่วนผสมของปฏิกิริยา หลอด PCR ที่มีส่วนผสมของปฏิกิริยาถูกเคลือบด้วยน้ำมันแร่ประมาณ 50 μl ท่อ PCR ถูกวางไว้ในวงจรระบายความร้อน และโปรแกรมการปั่นจักรยานได้รับการตั้งโปรแกรมตามคำแนะนำของผู้ผลิตโดยใช้โปรโตคอลการปั่นจักรยานมัลติเพล็กซ์สากล การตรวจหาผลิตภัณฑ์ PCR แบบมัลติเพล็กซ์ถูกตรวจพบโดย agarose gel electrophoresis ตามด้วยการย้อมสีด้วยเอธิเดียมโบรไมด์ 2% และมองเห็นดีเอ็นเอภายใต้แสงอัลตราไวโอเลตเมื่อเปรียบเทียบกับเครื่องหมายแสดงน้ำหนักโมเลกุลของบันได 100 bp (บันได DNA 100 bp และกลุ่มควบคุมเชิงลบ (ยุงที่ไม่เลี้ยงด้วยเลือด) ) ได้มาจากสถาบันวิจัยกีฏวิทยาการแพทย์ (Dokki ประเทศอียิปต์) และใช้ในปฏิกิริยา PCR แต่ละครั้ง

การวิเคราะห์ทางสถิติ

ข้อมูลที่เก็บรวบรวมได้รับการวิเคราะห์โดยโปรแกรม SPSS เวอร์ชัน 20 สำหรับ Windows (ชิคาโก อิลลินอยส์ สหรัฐอเมริกา) อัตราการติดเชื้อในยุงคำนวณโดยอัตราโดยประมาณของการติดเชื้อ (ERI) โดยใช้สูตรต่อไปนี้ ERI=1-(1-X/m) 1/k โดยที่ ‘X’ คือจำนวนบ่อบวก & #x02018m’ คือจำนวนพูลที่ตรวจสอบ และ ‘k’ คือจำนวนตัวอย่างเฉลี่ยในแต่ละพูล [34]


สรุปและข้อสรุป

เป็นที่ทราบกันดีอยู่แล้วว่า เอ๋. อัลโบปิกตัส มีจีโนมขนาดใหญ่ และสิ่งนี้ได้รับการยืนยันในรายงานปัจจุบัน ขนาดใหญ่นี้ปรากฏชัดในองค์ประกอบ DNA ที่ซ้ำกันจำนวนมากขึ้น การขยายตัวในหมวดหมู่ยีนที่เข้ารหัสโปรตีนทั้งหมดที่ถูกตรวจสอบ และปริมาณของจีโนมที่แสดงโดยการแทรกสำเนา DNA ของไวรัส RNA ขนาดจีโนมอาจเป็นสาเหตุส่วนหนึ่งที่ทำให้ยุงชนิดนี้ประสบความสำเร็จในฐานะสายพันธุ์ที่รุกราน รายการขนาดใหญ่ของ DNA ที่ไม่ได้เข้ารหัสและเข้ารหัสอาจให้สารตั้งต้นทางพันธุกรรมซึ่งการปรับตัวเกิดขึ้นหลังจากการคัดเลือกในสภาพแวดล้อมใหม่ ลำดับฉบับร่างได้รับการเผยแพร่เมื่อเร็ว ๆ นี้ของ an เอ๋. อัลโบปิกตัส ความเครียด, เฟลลินีที่เพิ่งรุกรานอิตาลี (66) การเปรียบเทียบระดับโมเลกุลโดยละเอียดของสายพันธุ์นั้นกับบรรพบุรุษที่นำเสนอในที่นี้คาดว่าจะเน้นถึงแง่มุมของวิวัฒนาการของจีโนมเนื่องจากสายพันธุ์นี้ปรับตัวให้เข้ากับเขตอบอุ่นมากขึ้น


สรุปโดยย่อ: 5 ตัวตรวจจับข้อผิดพลาดที่ดีที่สุด

บรรณาธิการของเราทำการวิจัย ทดสอบ และรับรองผลิตภัณฑ์ที่เราแนะนำ เราได้รับค่าคอมมิชชั่นจากการซื้อจากบางลิงค์

  • คุณสมบัติที่ดีที่สุด: SS Full Range Anti Spy RF Detector บน Spytechstop
  • ม้าหมุนที่ดีที่สุด:เครื่องตรวจจับสัญญาณ RF Eilimy Anti-Spy บน Spytechstop
  • งบประมาณที่ดีที่สุด:SS RF Bug Detector บน Spytechstop
  • กระดูกเปลือยที่ดีที่สุด:เครื่องตรวจจับสัญญาณ RF พื้นฐานบน Spytechstop
  • งานหนักที่ดีที่สุด:เครื่องตรวจจับสัญญาณ FeaYea RF บน Amazon

1. SS Full Range Anti Spy RF Detector

ความถี่: จาก 1 MHz ถึง 8 GHz
แบตเตอรี่: 800 mAh
เวลาทำงาน: 10-15 ชั่วโมง

ขยับขึ้นในช่วงราคา เรามีเครื่องตรวจจับ RF JMDHKK นี่เป็นอุปกรณ์ระดับไฮเอนด์ที่บรรจุในแพ็คเกจขนาดเล็กกะทัดรัด สัญญาว่าจะเป็นอุปกรณ์กวาดที่มีประสิทธิภาพสูง และเป็นไปตามคำสัญญานั้นอย่างแน่นอน

เครื่องตรวจจับไฮไลท์

  • ด้วยระยะการตรวจจับสูงสุด 40 ฟุต และช่วงความถี่สูงถึง 8GHz คุณจึงมั่นใจได้ว่าทุกสิ่งรอบตัวจะตรวจจับได้
  • ตั้งแต่ตัวติดตาม GPS ไปจนถึงระบบเสียงหรือวิดีโอที่ซ่อนไว้ มันจะหยิบทุกอย่าง
  • สิ่งหนึ่งที่มีและคุณจะไม่พบเครื่องตรวจจับข้อบกพร่องอื่นๆ อีกมากคือเทคโนโลยีเลเซอร์ LDE ดังที่คุณเห็นในภายหลัง หากกล้องไม่ส่งสัญญาณ คุณจะไม่สามารถรับสัญญาณได้จริง อย่างไรก็ตาม ด้วยเลเซอร์ คุณสามารถค้นหาอุปกรณ์กล้องที่อยู่ในโหมดสแตนด์บายได้ ซึ่งถือเป็นข้อได้เปรียบที่เหนือกว่าเครื่องตรวจจับอื่นๆ ในรายการของเรา นี่คือสาเหตุที่ราคาสูงเท่าที่เป็นอยู่

ทุกสิ่งที่พิจารณาถ้าคุณต้องการระดับไฮเอนด์ แต่ไม่ต้องการใช้จ่ายมากเกินไปนี่คือสิ่งที่จะได้รับ คุณมีพื้นฐานทั้งหมด รวมถึงคุณสมบัติขั้นสูงบางอย่างที่บรรจุอยู่ในแพ็คเกจที่ทนทาน คุณต้องการอะไรอีก

2. เครื่องตรวจจับสัญญาณ RF Eilimy Anti-Spy

ความถี่: จาก 1 MHz ถึง 8 GHz
แบตเตอรี่: 800 mAh
ไฟ LED แสดงสถานะ 9 ระดับ

หาก AHNR ไม่ได้ตัดมันให้คุณ และคุณต้องการใช้เงินเพิ่มอีกนิด นี่คือสิ่งที่คุณต้องการ Eilimy G319 เป็นเครื่องตรวจจับสัญญาณที่มีประสิทธิภาพอย่างเหลือเชื่อซึ่งจะช่วยให้คุณตรวจจับสัญญาณต่างๆ รอบตัวคุณได้จากแหล่งต่างๆ
มีความไวสูงมาก ช่วงการตรวจจับกว้าง และความสามารถในการป้องกันการรบกวนที่แข็งแกร่ง มันมีขนาดเล็กและกะทัดรัด และคุณสามารถใช้ได้ทุกที่ ตั้งแต่สำนักงาน ไปจนถึงบ้านและในรถยนต์ของคุณ

เครื่องตรวจจับไฮไลท์

  • โดยพื้นฐานแล้วนี่เป็นการอัพเกรดของ SS RF และมาพร้อมกับแบตเตอรี่ที่ทรงพลังกว่า รวมถึงชิปที่อัปเกรดแล้ว การอัปเกรดอื่นๆ ได้แก่ รูปลักษณ์ใหม่และคุณภาพที่สูงขึ้น
  • หากเรากำลังพูดถึงตัวเลข คุณมีช่วงความถี่ 1MHz สูงสุด 8GHz ซึ่งมากกว่า AHNR อย่างไรก็ตาม ยังใช้พลังงานมากกว่ามากที่ 60mA และใช้งานได้นานระหว่าง 15 ถึง 25 ชั่วโมง ขึ้นอยู่กับการใช้งานของคุณ
  • คุณภาพงานประกอบยังดีกว่า AHNR เนื่องจาก Eilimy ทำจากอลูมิเนียมอัลลอยด์ ซึ่งน่าจะใช้งานได้นานกว่า

สุดท้ายนี้ หากคุณต้องการลงทุนเพิ่มในอุปกรณ์ที่ได้รับการพิสูจน์แล้ว คุณจะไม่เสียใจเลย มันจะอยู่กับคุณชั่วขณะหนึ่ง และมันจะตรวจจับทุกสิ่งที่คุณอาจไม่ต้องการ

3. SS RF Bug Detector

ความถี่: จาก 1 MHz ถึง 6.5 GHz
แบตเตอรี่: 500 mAh
เวลาทำงาน: 5 ชั่วโมง

AHNR Bug Detector นั้นช่างเหลือเชื่อจริงๆ มันมีฟังก์ชั่นทั้งหมดที่คุณอาจต้องการและราคาก็ถูกสำหรับสิ่งที่คุณได้รับ
ชิปความไวช่วยให้คุณปรับเปลี่ยนได้ และมีช่วงความถี่กว้างตั้งแต่ 1MHz ถึง 6.5GHz สามารถตรวจจับคลื่นวิทยุจากระยะ 5 ซม. ถึง 10 ม. ทั้งนี้ขึ้นอยู่กับกำลังส่งของอุปกรณ์เฝ้าระวัง มีเลเซอร์โพรบ 920nm และฟิลเตอร์เลนส์ออปติคัลเฉพาะ

เครื่องตรวจจับไฮไลท์

  • นอกจากนี้ยังตรวจจับการรั่วไหลของรังสีแม่เหล็กไฟฟ้าที่รุนแรงซึ่งอาจเป็นอันตรายต่อสุขภาพของคุณ และในกรณีที่พบบางสิ่ง จะมีเสียง การสั่นสะเทือน และไฟแสดงสถานะ
  • เสาอากาศเซ็นเซอร์แม่เหล็กของ Searchlight ช่วยให้มั่นใจได้ถึงความน่าเชื่อถือและความแม่นยำ คุณสามารถใช้เพื่อค้นหาสิ่งต่างๆ เช่น ข้อบกพร่อง ตัวติดตาม GPS กล้องไร้สาย และอุปกรณ์อื่นๆ ไม่ว่าคุณจะอยู่ที่ไหน ถ้ามีอะไรก็จะหามันเจอ
  • และสุดท้ายแต่ไม่ท้ายสุด มีแบตเตอรี่ 450mAh อยู่ข้างใน ด้วยการบริโภค 8mA คุณสามารถมั่นใจได้ว่า AHNR จะคงอยู่ชั่วขณะหนึ่ง

ไม่ว่าคุณจะรู้สึกไม่ปลอดภัยในบ้านของคุณเองหรืออยู่ในบ้านของคนอื่น คุณสามารถมั่นใจได้ว่าด้วย AHNR RF Bug Detector คุณสามารถค้นหาอุปกรณ์ดักฟังที่อาจอยู่ที่นั่นได้อย่างง่ายดาย คุณไม่สามารถผิดพลาดกับมันได้

4. เครื่องตรวจจับสัญญาณ RF พื้นฐาน

ความถี่: จาก 1 MHz ถึง 6.5 GHz
แบตเตอรี่: 400 mAh
ตัวบ่งชี้ที่นำ

AMZCHEN เป็นเครื่องตรวจจับข้อผิดพลาดตัวที่สองของเราในรายการ แต่นั่นไม่ควรกีดกันคุณจากการซื้อเนื่องจากเป็นเครื่องตรวจจับที่ยอดเยี่ยมโดยรวม

  • นอกจากนี้ยังเป็นอุปกรณ์ที่เน้นด้านงบประมาณอีกด้วย สร้างคุณภาพเป็นตัวเอกแม้ว่าจะทำจากพลาสติก ครอบคลุมข้อมูลพื้นฐานทั้งหมดตั้งแต่ช่วงความถี่ 1MHz-6GHz ไปจนถึงแบตเตอรี่ที่มีอายุการใช้งานยาวนานและการแจ้งเตือนการแจ้งเตือนที่ดี
  • นอกจากนี้ยังมีตัวตรวจจับเลนส์ LED ซึ่งมักจะได้รับการต้อนรับในเครื่องตรวจจับจุดบกพร่อง
  • คุณจะได้รับหูฟังในกล่อง หากคุณต้องการทำสิ่งต่าง ๆ เป็นการส่วนตัว และไม่เตือนใครก็ตามที่คุณกำลังมองหาข้อบกพร่อง สิ่งนี้สามารถช่วยได้มาก
  • เอาล่ะ พูดตามตรง มันยังห่างไกลจากตัวตรวจจับจุดบกพร่องที่ดีที่สุดในตลาด อย่างไรก็ตาม เราพบว่ามันใช้งานได้จริงอย่างน่าชื่นชม มันไม่ล้มเหลวในการทดสอบใดๆ และมันสามารถค้นหาทุกสิ่งที่เราซ่อนไว้ได้
  • ที่มุมที่ถูกตัดอย่างเห็นได้ชัดคือคุณภาพของงานประกอบและแบตเตอรี่ 400mAH โชคดีที่คุณภาพงานประกอบไม่เลว แม้ว่าจะไม่ได้ยอดเยี่ยม และอายุแบตเตอรี่ก็จัดการได้

หากคุณมีงบประมาณจำกัด การต่อสู้ระหว่างสิ่งนี้กับ AMOMB ค่อนข้างจะแน่นแฟ้น และ AMOMB อยู่ในอันดับที่สูงกว่าในรายการของเรา ทางเลือกเป็นของคุณ

5. FeaYea RF เครื่องตรวจจับสัญญาณ

ความถี่: จาก 1 MHz ถึง 6.5 GHz
แบตเตอรี่: 400 mAh
ตัวบ่งชี้ที่นำ

กลับไปที่ตัวเลือกสำหรับงานหนัก เรามีตัวตรวจจับสัญญาณ Feayea นี่เป็นอุปกรณ์ขนาดเล็กที่ยอดเยี่ยมที่จะไม่พังทลาย แต่ยังมีคุณสมบัติที่ยอดเยี่ยมทั้งหมดที่คุณต้องการ

เครื่องตรวจจับไฮไลท์

  • คุณสามารถปรับความไวได้ และมีไฟสี่ดวงที่สว่างขึ้นเมื่อคุณได้รับสัญญาณที่แรงกว่า
  • ช่วงการตรวจจับอยู่ระหว่าง 30 ซม. ถึง 30 ม. ซึ่งมากเกินพอ แบตเตอรี่ 450mAH เพียงพอ โดยเฉพาะอย่างยิ่งกับการบริโภค 8mA
  • ช่วงความถี่ตั้งแต่ 1MHz ถึง 6.5GHz

ตอนนี้ ถ้าคุณชอบ JMDHKK หรือ Eilimy นี่อาจดูเหมือนอุปกรณ์ที่ยอดเยี่ยมที่คุ้มค่าเงินของคุณ หรือเวลาของคุณสำหรับเรื่องนั้น อย่างไรก็ตาม ไม่ใช่ทุกคนที่ต้องการใช้จ่ายมากขนาดนั้น หากคุณเป็นคนหนึ่งที่ไม่ทำสิ่งนี้อาจเป็นทางเลือกที่ดี มีพื้นฐานทั้งหมด มีฟิลเตอร์เลนส์ออปติคัลเฉพาะ และสร้างขึ้นค่อนข้างดี แน่นอนว่ามันจะไม่อยู่ได้นานกว่ารุ่นที่ใช้งานหนักมากบางรุ่น แต่ถ้าคุณระมัดระวังมากกว่านี้อีกนิดก็อาจจะดีในขณะที่ หากคุณอยู่ในงบประมาณปานกลาง นี่เป็นการซื้อที่ดี

เครื่องตรวจจับ RF ต่อต้าน Spy แบบเต็มรูปแบบ SS

เลือกของเราอีกครั้ง

ขยับขึ้นในช่วงราคา เรามีเครื่องตรวจจับ RF JMDHKK นี่เป็นอุปกรณ์ระดับไฮเอนด์ที่บรรจุในแพ็คเกจขนาดเล็กกะทัดรัด สัญญาว่าจะเป็นอุปกรณ์กวาดที่มีประสิทธิภาพสูง และเป็นไปตามคำสัญญานั้นอย่างแน่นอน


การควบคุมทางชีวภาพของโรคที่มียุงเป็นพาหะ: ศักยภาพของ Wolbachia- การแทรกแซงตาม IVM Framework

ผู้คนที่อาศัยอยู่ในเขตร้อนและกึ่งเขตร้อนของโลกต้องเผชิญกับภาระด้านสุขภาพมหาศาลอันเนื่องมาจากโรคที่มียุงเป็นพาหะ เช่น มาลาเรีย ไข้เลือดออก และโรคเท้าช้าง ในอดีตและปัจจุบัน การกำหนดเป้าหมายยุงพาหะโดยหลักแล้ว กลยุทธ์การควบคุมด้วยยาฆ่าแมลงเป็นกลยุทธ์ในการควบคุมที่สำคัญต่อโรคที่มียุงเป็นพาหะหลัก อย่างไรก็ตาม ความสำเร็จจนถึงปัจจุบันของแนวทางดังกล่าวอยู่ภายใต้การคุกคามจากกลไกต้านทานยาฆ่าแมลงหลายชนิด ในขณะที่ตัวเลือกการควบคุมพาหะนำโรค (VC) ยังคงมีจำกัด สถานการณ์จึงจำเป็นต้องมีการพัฒนามาตรการควบคุมที่เป็นนวัตกรรมใหม่เพื่อป้องกันโรคที่มียุงเป็นพาหะหลัก ยุงที่แพร่เชื้อด้วยแบคทีเรียที่มีชีวิตแบบพึ่งพาอาศัยกันซึ่งสามารถแข่งขันกับเชื้อโรคที่เป็นเป้าหมายหรือจัดการกับชีววิทยาของโฮสต์เพื่อลดความสามารถในการพาหะของพวกมันเป็นแนวทางการควบคุมทางชีวภาพที่มีแนวโน้มและเป็นนวัตกรรมใหม่ ในการทบทวนนี้ เราจะหารือเกี่ยวกับสถานะปัจจุบันของความรู้เกี่ยวกับความสัมพันธ์ระหว่างยุงและ Wolbachiaโดยเน้นถึงข้อจำกัดของกลยุทธ์การควบคุมยุงแบบต่างๆ และการใช้จุลินทรีย์ทั่วไปของยุงเป็นแนวทางใหม่ในการควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะ

1. บทนำ

ยุงของ ยุงก้นปล่อง, ยุงลาย, และ คูเล็กซ์ สกุลประกอบด้วยพาหะนำโรคที่สำคัญหลายชนิด ได้แก่ โปรโตซัว ไวรัส และไส้เดือนฝอยก่อโรค [1] ดังนั้น นับตั้งแต่การเชื่อมโยงครั้งแรกกับการแพร่กระจายของเชื้อโรคดังกล่าวไปยังมนุษย์และสัตว์มีกระดูกสันหลังอื่นๆ ในปลายศตวรรษที่ 19 [1] การกำหนดเป้าหมายเป็นพาหะนำยุงเพื่อขัดขวางการแพร่โรคจึงเป็นกลยุทธ์สำคัญในการควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะหลัก เช่น มาลาเรีย ไข้เหลือง ไข้เลือดออก ไข้ชิคุนกุนยา และการติดเชื้อไวรัสซิกา ในช่วงไตรมาสแรกของศตวรรษที่ 20 กิจกรรมการควบคุมยุงมีพื้นฐานมาจากการลดแหล่งที่มา ผ่านการกำจัดลูกน้ำโดยใช้น้ำมันปิโตรเลียมและปลาที่กินน้ำ ร่วมกับการจัดการด้านสิ่งแวดล้อม [2] ด้วยการถือกำเนิดของไดคลอโรไดฟีนิลไตรคลอโรอีเทน (DDT) และการค้นพบคุณสมบัติของยาฆ่าแมลงในต้นทศวรรษ 1940 ยุคเคมีของการควบคุมพาหะนำโรค (VC) ได้เริ่มต้นขึ้นโดยมีการแทรกแซงโดยอาศัยดีดีทีเป็นหลัก ทั้งในด้านยาฆ่าแมลงและยาฆ่าแมลง [3] สิ่งพิมพ์ของ “ฤดูใบไม้ผลิเงียบ” โดย Rachel Carson ในปี 1962 ได้หยิบยกข้อกังวลของสาธารณชนเกี่ยวกับการใช้ DDT ขึ้น โดยมีลักษณะเป็นพิษของสัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมสูง ความเสี่ยงในการเป็นพิษต่อสิ่งมีชีวิตที่ไม่เป็นเป้าหมาย ความคงอยู่ของพื้นผิวชีวมณฑล และการสะสมในห่วงโซ่อาหาร [2] ความกังวลของสาธารณชนที่เพิ่มขึ้นเกี่ยวกับมลพิษทางอินทรีย์ที่ตกค้างยาวนาน (POPs) ทำให้ DDT ถูกแบน โชคดีที่ในช่วงทศวรรษ 1980 ไม่กี่ปีก่อนการห้าม DDT สารประกอบไพรีทรอยด์สังเคราะห์ถูกเพิ่มเข้าไปในคลังแสงของยาฆ่าแมลงด้านสาธารณสุข [4] ระหว่างปี พ.ศ. 2543 ถึง พ.ศ. 2558 มีการใช้ตาข่ายคลุมเตียง (ITNs) การฉีดพ่นสารตกค้างในอาคาร (IRS) ที่มียาฆ่าแมลงตกค้าง และกลยุทธ์ที่ใช้ยาฆ่าแมลงอื่น ๆ อย่างกว้างขวางเป็นเครื่องมือแนวหน้าในการต่อต้านพาหะนำโรคมาลาเรียและโรคที่มียุงเป็นพาหะอื่น ๆ [5] ในกรอบงาน Integrated Vector Management (IVM) [3] อย่างไรก็ตาม แม้จะมีข้อขัดแย้ง กลไกการดื้อยาฆ่าแมลงที่เพิ่มขึ้นหลายแบบก็คุกคามที่จะย้อนกลับความคืบหน้าในการกำจัดหรือควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะหลัก [1, 6] ในบริบทนี้ ความสนใจได้หันไปทางการวิจัยเกี่ยวกับการควบคุมทางชีวภาพ วิธีการแปลงพันธุ์และพาราทรานส์เจนิกเป็นทางเลือกที่เป็นไปได้ หรือเสริมกลยุทธ์ทางเคมีในปัจจุบัน [7]

การดัดแปลงพันธุกรรมของยุงมีพื้นฐานมาจากการดัดแปลงทางพันธุกรรมเพื่อแนะนำองค์ประกอบใหม่ ๆ เข้าไปในจีโนมของยุง ตามที่อับราฮัมและคณะ [8] วิธีการแปลงพันธุ์ที่สำคัญสองวิธีคือ (i) การปราบปรามหรือจำกัดความสามารถของพาหะนำโรคเพื่อทำหน้าที่เป็นโฮสต์ที่มีความสามารถสำหรับการพัฒนาปรสิต ดังนั้นจึงลดหรือขจัดความสามารถในการถ่ายทอดเชื้อโรค (ความสามารถของเวกเตอร์) และ (ii) การปราบปรามทางพันธุกรรมของประชากรแมลงโดยการลดอายุขัยของพาหะที่รู้จัก แนวทางเหล่านี้สามารถใช้เพื่อควบคุมประชากรยุงได้โดยการลดความสามารถในการแพร่เชื้อในคนหรือสัตว์ [9] ตัวอย่างเช่น ยุงก้นปล่อง gambiae และ ยุงก้นปล่อง stephensiซึ่งเป็นพาหะนำโรคมาลาเรียหลักตามลำดับในแอฟริกาและเอเชีย ได้รับการออกแบบอย่างประสบความสำเร็จเพื่อแทรกแซงปรสิตมาลาเรีย เพื่อหยุดหรืออย่างน้อยก็ลดการแพร่ของโรค [10, 11] ทุกวันนี้ มีศักยภาพมหาศาลสำหรับกลยุทธ์การควบคุมเวกเตอร์ดัดแปรพันธุกรรม อย่างไรก็ตาม การดัดแปลงพันธุกรรมมีแนวโน้มที่จะลดสมรรถภาพของยุงที่ดัดแปลง ดังนั้นจึงลดโอกาสที่ประสบความสำเร็จในการแพร่กระจายยีนที่น่าสนใจในหมู่ประชากรตามธรรมชาติของสายพันธุ์เวกเตอร์ที่เป็นเป้าหมาย [12] นอกจากนี้ ความล้มเหลวในการแพร่กระจายของทรานส์ยีน (การสื่อสารส่วนบุคคลของ Weill M.) การกลายพันธุ์และอัตราการรวมตัวกันใหม่อาจบ่อนทำลายความเป็นไปได้หรือความทนทานของแนวทางดังกล่าวอย่างจริงจังตามที่คาดการณ์ไว้สำหรับเจมิไนไวรัสที่ออกแบบโดยมีเป้าหมายเพื่อปกป้องพืชผลในภาคเกษตร [5]

การค้นพบล่าสุดของแบคทีเรียที่มีชีวิตทางชีวภาพจำนวนหนึ่งที่อาศัยอยู่ในลำไส้และ/หรือเนื้อเยื่อสืบพันธุ์ของสัตว์ขาปล้องได้เปิดทางสำหรับกลยุทธ์การควบคุมที่เป็นนวัตกรรมใหม่เพื่อต่อต้านโรคที่เกิดจากพาหะนำโรคบางชนิด [13, 14] ที่จริงแล้ว แบคทีเรียที่สัมพันธ์กับยุงสามารถทำให้เกิดโรคได้โดยตรงต่อโฮสต์ของพวกมัน [15] ขัดขวางการสืบพันธุ์ [16, 17] และลดความสามารถในการพาหะนำโรค [18] นอกจากนี้ การใช้แบคทีเรียดัดแปลงพันธุกรรมเพื่อส่งโมเลกุลต้านปรสิตมีข้อดีหลายประการเหนือการใช้เวกเตอร์ดัดแปลงพันธุกรรม [19] กลยุทธ์ในการใช้ประโยชน์จากจุลินทรีย์ที่มีชีวิตทางชีวภาพเพื่อควบคุมโรคที่เกิดจากพาหะนำโรคเรียกว่า พาราทรานส์เจเนซิส (paratransgenesis) กล่าวคือ การสร้างซิมไบโอออนที่ออกแบบทางวิศวกรรมซึ่งแสดงโมเลกุลต้านปรสิต [20] ยิ่งไปกว่านั้น สิ่งมีชีวิตที่สามารถจัดการกับชีววิทยาของโฮสต์และแม้กระทั่งทำให้อายุขัยสั้นลงอาจเป็นที่สนใจสูงสุดสำหรับการใช้เป็นสารควบคุมทางชีวภาพ

ในช่วงทศวรรษที่ผ่านมา มีการให้ความสำคัญกับจุลินทรีย์ที่มีชีวิตแบบพึ่งพาอาศัยกันเพื่อระบุตัวเลือกที่มีศักยภาพซึ่งสามารถนำมาใช้ในแนวทางการควบคุมพาหะนำโรคแบบใหม่ ในบรรดาผู้สมัครที่มีแนวโน้มมากที่สุด หลายสายพันธุ์ วอลบาเชีย แบคทีเรียเอนโดซิมไบโอติกที่โดดเด่นของแมลงหลายชนิดรวมถึงพาหะนำโรคจากสัตว์สู่คนเป็นที่สนใจสูงสุดสำหรับชุมชนวิทยาศาสตร์ อย่างแท้จริง, Wolbachia เป็นพันธุกรรมที่สืบทอดมาจากมารดาซึ่งสามารถแพร่เชื้อไปยังอวัยวะสืบพันธ์ของยุงเพื่อให้อยู่รอดได้เองในประชากรโฮสต์ แต่ยังรวมถึงเนื้อเยื่อร่างกายที่มีการพัฒนาของเชื้อโรคและแข่งขันกับพวกมัน ดังนั้นจึงเป็นสารควบคุมทางชีวภาพที่น่าสนใจซึ่งสามารถใช้เพื่อหยุดหรือป้องกันการแพร่เชื้อของสัตว์มีกระดูกสันหลังหลายชนิดไปยังมนุษย์และสัตว์เลี้ยง [21]

ในการทบทวนนี้ เราจะหารือเกี่ยวกับสถานะปัจจุบันของความรู้เกี่ยวกับความสัมพันธ์ระหว่างยุงและ Wolbachiaโดยเน้นที่ข้อจำกัดของกลยุทธ์การควบคุมยุงแบบต่างๆ และการใช้จุลินทรีย์ทั่วไปของยุงเป็นแนวทางใหม่ในการควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะ

2. ระเบียบวิธี

2.1. วิธีค้นหา

การค้นหาวรรณกรรมแบบ Peer-reviewed ดำเนินการโดยใช้ฐานข้อมูลออนไลน์ เช่น PubMed, Bibliovie, ฐานข้อมูล INSERM, Web of Knowledge และ Google Scholar สำหรับบทความ การค้นหาวรรณกรรมสีเทาดำเนินการโดยใช้หน้าเว็บขององค์การอนามัยโลก (WHO) คำค้นหาหลักที่ใช้คือการรวมกันของ "ยุง", "วอลบาเชีย", "การควบคุมทางชีวภาพ", "การควบคุม" และ "โรคที่มียุงเป็นพาหะ" โดยใช้ตัวดำเนินการบูลีน "OR" และการผสมผสานระหว่างแนวคิดที่ใช้ตรรกะ "AND ”

2.2. การคัดกรองข้อมูล

เอกสารทั้งหมดได้รับการตรวจสอบอย่างรวดเร็วเพื่อประเมินความเกี่ยวข้องกับโครงการโดยใช้ข้อมูลในชื่อเรื่องและบทคัดย่อ เลือกชุดย่อยของเอกสารที่เกี่ยวข้องทั้งหมด จัดเรียงตามส่วน ทบทวนเพิ่มเติมและเรียบเรียงในต้นฉบับ

3. ข้อความหลัก

3.1. สกุล Wolbachia (Alphaproteobacteria)
3.1.1. คำอธิบาย การจำแนกประเภทและสายวิวัฒนาการ

แบคทีเรียในสกุล Wolbachia เป็นภาระผูกพันของแบคทีเรียแกรมลบภายในเซลล์ที่เป็นของ อัลฟาโปรตีโอแบคทีเรีย คลาส (ตารางที่ 1) พบในไซโทพลาสซึมแวคิวโอลภายในเซลล์ของแมลง ไอโซพอด ไร แมง และไส้เดือนฝอย [22] สกุลนี้ถูกค้นพบครั้งแรกในปี 1924 โดย Marshall Hertig และ S. Burt Wolbach ในอวัยวะสืบพันธุ์ของ Culex pipiens [23] ต่อมา Hertig อธิบายในปี 1936 ซึ่งตั้งชื่อสกุลตามผู้ทำงานร่วมกัน [24]

Wolbachia pipientis เป็นสปีชีส์ที่ถูกต้องเฉพาะของสกุล เป็นที่น่าสังเกตว่า อีกสองสายพันธุ์ที่เคยอธิบายว่าเป็นของสกุล Wolbachia [25]: Wolbachia melophagi และ Wolbachia persica ถูกลบออกหลังเมื่อ [26] W. melophagi ตอนนี้ถือว่าเป็น นาม nudumเนื่องจากไม่พบสายพันธุ์นี้จนถึงปัจจุบัน ในขณะที่ W. persicaซึ่งแยกจากเห็บอ่อนๆ อาร์กัส เพอซิคัสถูกนำมาประกอบอย่างผิดพลาดกับสกุลตามที่เปิดเผยโดยการวิเคราะห์สายวิวัฒนาการของยีน 16S rRNA ที่แสดงความสัมพันธ์อย่างใกล้ชิดกับสกุล ฟรานซิสเซลล่า [27].

ทางสัณฐานวิทยา Wolbachia เป็นแบคทีเรีย pleomorphic (รูปที่ 1) มีลักษณะเป็นแท่งขนาดเล็ก [0.5–1.3 ไมโครl ความยาว] และรูปแบบ coccoid [0.25–1 ไมโครl] แบบฟอร์มขนาดใหญ่ [1–1.8 ไมโครl เส้นผ่านศูนย์กลาง] เติบโตภายใน vacuoles ในไซโตพลาสซึมของเซลล์เจ้าบ้าน [28] แม้จะมีโครงสร้างผนังเซลล์แกรมลบ Wolbachia มีการย้อมสีแบบแกรมได้ไม่ดี แต่สามารถมองเห็นได้ชัดเจนโดยใช้วิธีการย้อมแบบดิฟฟ์-ควิก และเมย์-กรุนวัลด์-จิมซา การใช้คราบ Gimenez ยังสามารถมองเห็นเป็นโครงสร้างสีน้ำเงินเข้มภายในไซโตพลาสซึมสีน้ำเงินแกมเขียว [29] เนื่องจากไม่เกิด morulae และติดเชื้อเฉพาะสัตว์ขาปล้องและไส้เดือนฝอย Wolbachia แยกแยะได้ง่ายจากสกุลอื่นๆ ที่เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิด [28]

การวิเคราะห์สายวิวัฒนาการของยีน 16S rRNA (รูปที่ 2) พบว่า W. pipientis, NS นาม ของสกุล สร้างกลุ่ม monophyletic ภายใน อัลฟาโปรตีโอแบคทีเรีย คลาสที่เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดกับ อนาพลาสมา, เออร์ลิเชีย และ Neorickettsia สกุลของ Anaplasmataceae ครอบครัว [28].

การวิเคราะห์เพิ่มเติมตาม 16S rRNA และ Wolbachia โปรตีนพื้นผิว (wsp) ยีน ถูกใช้เพื่อจัดกลุ่มสปีชีส์เป็นเครื่องชั่งอนุกรมวิธานที่ละเอียดกว่า ระบบขึ้นอยู่กับระดับของความคล้ายคลึงกันใน wsp มีการเสนอลำดับยีนสำหรับการจัดกลุ่มสายพันธุ์ จนถึงปัจจุบัน มีการระบุและกำหนดสายเลือดวิวัฒนาการหลัก 16 สายพันธุ์จากแท็กซ่าโฮสต์ต่างๆ ที่รู้จักกันในชื่อ “ซูเปอร์กรุ๊ป” และกำหนดโดยตัวอักษร A ถึง Q ยกเว้น G [22] ประโยชน์ของการชุมนุมดังกล่าวยังคงเป็นที่ถกเถียงกันอยู่และข้อเสนอแนะของการแยกออก W. pipientis หลายชนิดมีข้อดีและข้อเสีย [32, 33].

โดยปกติ supergroups A และ B จะแพร่กระจายอย่างกว้างขวางในแท็กซ่าอาร์โทรพอดจำนวนมาก [34] บรรพบุรุษร่วมกันของพวกเขาอาจจะแยกจากกันเมื่อประมาณ 58–67 ล้านปีก่อน ในช่วงเวลาที่ทุกคนทันสมัย สัตว์ขาปล้อง มีคำสั่งซื้อแล้ว [22] supergroups C และ D เป็น endosymbionts ที่เป็นประโยชน์และเป็นประโยชน์ในไส้เดือนฝอยบางชนิด [34–37] ในขณะที่ F supergroup นั้นมีลักษณะเฉพาะและมีทั้งไส้เดือนฝอยและอาร์โทรพอด Wolbachia สายพันธุ์ [37–40] เฉพาะเจาะจงมากขึ้นสำหรับเชื้อสายเจ้าบ้านบางสายพันธุ์ สายพันธุ์ใน supergroup E ได้รับรายงานจาก คอลเลมโบลา [41, 42] ใน H จากปลวก [40] และใน M และ N จากเพลี้ย [43] มีการระบุ supergroups ที่แตกต่างกันเพิ่มเติมในไส้เดือนฝอยหรือสัตว์ขาปล้อง [34]

3.1.2. ภาระผูกพันไลฟ์สไตล์ภายในเซลล์

จุลินทรีย์ก่อโรคหลายชนิดมีปฏิสัมพันธ์กับโฮสต์ของพวกมันในหลายวิธีและซับซ้อน หลายชนิดเป็นเซลล์นอกเซลล์ ในขณะที่ส่วนอื่นๆ บุกรุกอวัยวะและทวีคูณภายในเซลล์เวกเตอร์เฉพาะ [44] Wolbachia อยู่ในกลุ่มหลังและมีวิถีชีวิตดั้งเดิมในฐานะ symbiont ภายในเซลล์ (endosymbiont) ที่มีความสัมพันธ์ใกล้ชิดกับเซลล์ยูคาริโอตที่ติดเชื้อ [45] ในสัตว์ขาปล้อง Wolbachia เติบโตภายใน vacuoles มักจะอยู่ภายในไซโตพลาสซึมในเซลล์สืบพันธุ์ของโฮสต์ อย่างไรก็ตาม พวกมันยังสามารถพบได้ในเนื้อเยื่อร่างกาย ซึ่งรวมถึงเนื้อเยื่อประสาทและเซลล์เม็ดเลือด [28] การวิจัยที่เพิ่มขึ้นได้ให้ข้อมูลเชิงลึกที่น่าตื่นเต้นในแง่มุมต่างๆ ของ Wolbachiaชีววิทยา [46]. ผลที่ตามมาที่ชัดเจนที่สุดประการหนึ่งของการมีอยู่ภายในเซลล์สืบพันธุ์คือการอำนวยความสะดวกในการถ่ายทอดผ่าน transovarian ไปยังลูกหลานของเจ้าบ้าน การวิเคราะห์จีโนมตามลำดับของสมาชิกหลายคนของ เอ-โปรตีโอแบคทีเรีย กลุ่มที่เป็นของ Wolbachia สกุล ยังให้ความเข้าใจมากขึ้นเกี่ยวกับวิวัฒนาการของจีโนมที่ลดลงและการแปรผันของแอนติเจน ตลอดจนวิธีที่พวกมันจัดการกับเซลล์เจ้าบ้าน [44] อย่างไรก็ตาม วิถีชีวิตภายในเซลล์ได้นำไปสู่การสูญเสียยีนหลายตัวอันเป็นผลมาจากขนาดจีโนมที่ลดลง ซึ่งแปรผันจาก 1.1 Mb ถึง 1.5 Mb รวมถึงยีนที่มีการเข้ารหัสโปรตีนน้อยกว่า 1,000 ยีน [45] นอกจากนี้ ยังมีรายงานอีกว่าลักษณะคล้ายคลึงภายในเซลล์ เช่น Wolbachia, ถ่ายโอนยีนไปยังนิวเคลียสของโฮสต์และในทางกลับกัน [47, 48]. Leclercq และคณะ [49] แสดงความสัมพันธ์สูงระหว่างลำดับการเข้ารหัสของ f-องค์ประกอบ ของแมลงทั่วไป (Armadillidium vulgare) ด้วยจีโนมชิ้นใหญ่ของสตรี wVulC Wolbachia ความเครียด. Symbionts อาจได้รับยีนจาก symbionts อื่น ๆ [47] ระดับสูงของการแลกเปลี่ยนทางพันธุกรรมใน Wolbachia ที่กล่าวมาข้างต้นแสดงให้เห็นว่าจีโนมหลักของมันสมบูรณ์โดยจีโนมเสริมที่กว้างขวาง ตามที่อิชมาเอลและคณะอธิบาย [50] จีโนมแกนกลางประกอบด้วยยีนการดูแลทำความสะอาดทั้งหมดที่ใช้ร่วมกัน (หรือเกือบทั้งหมด) สายพันธุ์ที่มีลำดับสำหรับอนุกรมวิธานที่กำหนด ในขณะที่ยีนอื่นๆ ทั้งหมดประกอบเป็นจีโนมเสริม ซึ่งครอบคลุมความผันแปรทางพันธุกรรมภายในสปีชีส์

3.1.3. การจัดการการสืบพันธุ์ของโฮสต์

Wolbachia โดยทั่วไปแล้วจะถูกส่งผ่านในแนวตั้งผ่านไข่ของโฮสต์และเปลี่ยนแปลงชีววิทยาของโฮสต์ในหลากหลายวิธี สิ่งเหล่านี้ทำให้เกิดการจัดการการสืบพันธุ์ (รูปที่ 3) เช่น (i) การทำให้เป็นสตรีของผู้ชายที่ติดเชื้อ (เช่น การเปลี่ยนเพศผู้ให้กลายเป็นผู้หญิง) (ii) ทำให้เกิดการแบ่งส่วน (เช่น การสืบพันธุ์โดยไม่มีตัวผู้) (iii) การฆ่าตัวผู้ที่ติดเชื้อและ (iv ) ความเข้ากันไม่ได้ของไซโตพลาสซึม (เช่น การดัดแปลงสเปิร์มจากตัวผู้ที่ติดเชื้อส่งผลให้ตัวอ่อนมีข้อบกพร่องและเสียชีวิต) [34, 51]

(1) การทำให้เป็นผู้หญิง. ผู้ชายที่ติดเชื้อคือ "ทางตัน" สำหรับ Wolbachia มรดกเพราะไม่ถ่ายทอด Wolbachia การติดเชื้อของลูกหลาน ดังนั้นการเปลี่ยนลูกหลานที่ติดเชื้อให้กลายเป็นเพศหญิงจึงเพิ่มศักยภาพในการ Wolbachia เพื่อส่งต่อให้คนรุ่นหลัง ปรากฏการณ์นี้อธิบายครั้งแรกในไอโซพอดเช่น Armadillidium vulgare และเมื่อเร็ว ๆ นี้ในแมลง [52] ซึ่งเกี่ยวข้องกับกลไกต่าง ๆ ที่ทำงานในระยะตัวอ่อน [51, 52] ในไอโซพอดบนบกหลายชนิดตามลำดับ Oniscidae, Wolbachia บุกรุกต่อมแอนโดรเจน ต่อม hypertrophied ถูกยับยั้ง ทำให้พันธุกรรมเพศชายพัฒนาเป็นเพศหญิง [53] ในบรรดาแมลง มีรายงานสายพันธุ์ที่เป็นผู้หญิงใน Ostrinia furnacalis (ผีเสื้อกลางคืน) และใน ยูเรมา เฮคาเบ้ (ผีเสื้อกลางคืน) และ ไซจินิเดีย พูลลา (อัมพาตครึ่งซีก) ซึ่งกลไกที่เกี่ยวข้องยังไม่ชัดเจน [51]

(2) Parthenogenesis. อีกหนึ่งกลยุทธ์ที่เป็นประโยชน์ในการเพิ่มมรดกของมารดาของ Wolbachia คือการกระตุ้นให้เกิดการผลิตลูกของเพศหญิงโดยไม่ต้องปฏิสนธิโดยสเปิร์ม กระบวนการที่เรียกว่า parthenogenesis (thelytoky) Wolbachia- การเกิด parthenogenesis ของเพศหญิงพบได้น้อยกว่าและได้รับการบันทึกไว้ในสปีชีส์ haplodiploid เช่น เพลี้ยไฟเท่านั้น (Thysanoptera), ไร (อะคาริ) และตัวต่อ (Hymenoptera) [51]. ในสิ่งมีชีวิตเหล่านี้ โดยปกติผู้ชายจะพัฒนาจากไข่เดี่ยวที่ไม่ได้รับการผสม (arrhenotokous parthenogenesis) ในขณะที่ตัวเมียพัฒนาจากไข่ซ้ำที่ปฏิสนธิ Wolbachia ขัดขวางการพัฒนาของตัวอ่อนในระยะเริ่มต้นของเซลล์ เพิ่มจำนวนโครโมโซมในไข่เดี่ยวที่ไม่ได้รับการผสมพันธุ์เป็นสองเท่า และทำให้เป็นซ้ำ สิ่งนี้นำไปสู่การพัฒนาในฐานะผู้หญิงที่มีการผลิตแบบไม่อาศัยเพศ ดังนั้นตัวเมียที่ติดเชื้อจึงผลิตลูกสาวได้มากเป็นสองเท่าของลูกสาวที่ไม่ติดเชื้อ ทำให้ไซโตพลาสซึมของพวกมันถูกส่งไปยังหลานสาวมากเป็นสองเท่าของจำนวนที่เป็นไปได้ [54]

(3) การฆ่าผู้ชาย. ใน Coleoptera, ผีเสื้อกลางคืน, Diptera (แมลง) และ Pseudoscorpiones (อรัญนิดา), Wolbachia ชักนำให้ฆ่าลูกหลานชายของหญิงที่ติดเชื้อ ฟีโนไทป์นี้ซึ่งส่วนใหญ่เกิดขึ้นระหว่างการสร้างตัวอ่อน ให้ประโยชน์ด้านฟิตเนสแก่ลูกหลานหญิงในแง่ของการแข่งขันเพื่อแย่งชิงทรัพยากร - ชักนำการฆ่าชายเกิดขึ้นจากการเป็นผู้หญิงที่ถึงตาย แท้จริงแล้ว เมื่อการหยั่งรู้กลไกลได้แสดงให้เห็นว่า Wolbachia มารดาที่ติดเชื้อได้รับการรักษาด้วย tetracycline เพื่อกำจัด Wolbachia, พันธุกรรมตัวผู้อยู่รอดในขณะที่อยู่ของ Wolbachia, พันธุกรรมตัวผู้กลายเป็นผู้หญิงและตายในระหว่างการพัฒนาของตัวอ่อน [51, 54].

(4) ความเข้ากันไม่ได้ของไซโตพลาสซึม (CI). Wolbachia-ความเข้ากันไม่ได้ของไซโตพลาสซึม (CI) คือฟีโนไทป์ของการจัดการการสืบพันธุ์ที่มีการอธิบายบ่อยที่สุด ความไม่ลงรอยกันของการสืบพันธุ์ระหว่างประชากรของ Culex pipiens ยุงถูกรายงานครั้งแรกในปี 1950 แต่ Wolbachia ถูกระบุว่าเป็นสาเหตุเฉพาะในทศวรรษ 1970 [55] ฟีโนไทป์นี้ประกอบด้วยสององค์ประกอบที่แตกต่างกัน: Wolbachia-เหนี่ยวนำให้เกิดการดัดแปลงของตัวอสุจิระหว่างการสร้างอสุจิและการช่วยเหลือการดัดแปลงนี้ในตัวอ่อนที่ติดเชื้อด้วยสายพันธุ์เดียวกัน [51] การข้ามที่เข้ากันไม่ได้เนื่องจากการไม่ตรงกันของระยะโปรนิวเคลียสของเพศชายและเพศหญิงในระยะเริ่มต้นของไมโทซิส เกิดขึ้นเมื่อ Wolbachia- ตัวผู้ที่ติดเชื้อจะผสมพันธุ์กับตัวเมียที่ไม่ติดเชื้อ (unidirectional CI) CI แบบสองทิศทางเกิดขึ้นเมื่อทั้งคู่ติดเชื้อโดยต่างกันแต่เข้ากันไม่ได้ Wolbachia ทำให้เกิดการตายข้ามทั้งสองทิศทาง CI ได้รับการอธิบายอย่างกว้างขวางในสปีชีส์ของสัตว์ขาปล้องหลายชนิดที่ติดเชื้อโดย Wolbachia สายพันธุ์ที่เป็นของซุปเปอร์กรุ๊ป A และ B [56]

3.1.4. Wolbachia เอสพีพี และแมลง

ธรรมชาติของ “โรคระบาด” ของ Wolbachia [46] ส่งผลให้มีการแพร่กระจายอย่างแพร่หลายในโฮสต์ที่ไม่มีกระดูกสันหลังหลายชนิด (รูปที่ 4) อธิบายได้จากความสามารถในการจัดการการขยายพันธุ์ของโฮสต์ แต่ยังรวมถึงความสามารถในการเคลื่อนที่ในแนวนอนข้ามขอบเขตของสายพันธุ์ [51, 54] มีการประเมินว่า . สายพันธุ์ต่างๆ Wolbachia อาจติดเชื้อมากกว่า 65% ของแมลงชนิดต่างๆ [34] ในบรรดายุงเหล่านี้ พบว่ามียุงหลายสายพันธุ์จากสกุลต่างๆ ที่มีสายพันธุ์ต่างกัน

) หมายถึงการค้นพบล่าสุดของเจ้าของภาษา Wolbachia ภายใน ยุงก้นปล่อง ประเภท.

3.2. ยุง (Diptera, Culicidae)
3.2.1. อนุกรมวิธาน การจำแนกประเภท และสายวิวัฒนาการ

ยุงเป็นกลุ่ม monophyletic ที่อยู่ในคำสั่งของ Diptera (ตารางที่ 2 และรูปที่ 5) [58] ที่มาและประวัติสายวิวัฒนาการของตระกูล Culicidae ย้อนหลังไปถึงยุคเมโซโซอิก ประมาณการว่ายุงลายสายเลือดหลักในปัจจุบันมีมาตั้งแต่ยุคครีเทเชียสตอนต้น (145-100 ล้านปี) [58, 59]

ครอบครัวของ Culicidae เป็นกลุ่มใหญ่และอุดมสมบูรณ์ ซึ่งกระจายจากละติจูดเขตร้อนไปยังเขตอบอุ่น เหนือเส้นอาร์กติกเซอร์เคิล ประกอบด้วยประมาณ 4,000 สปีชีส์ แบ่งออกเป็น 2 วงศ์ย่อย และ 112 สกุล อนุวงศ์ ยุงก้นปล่อง มีสามสกุลและ คูลิซิเน่ มี 109 สกุล แบ่งออกเป็น 11 เผ่า [58]

ยุงมีความสำคัญทางการแพทย์และสัตวแพทย์เป็นสำคัญ ในเกือบทั้งหมด Culicidae สปีชีส์มีเพียงตัวเมียเท่านั้นที่กินสัตว์มีกระดูกสันหลังเพราะต้องการเลือดเพื่อผลิตลูกหลาน ในระหว่างการดูดเลือด การหลั่งน้ำลายที่ซับซ้อนช่วยให้อาหารง่ายขึ้น แต่ยังช่วยให้เชื้อก่อโรคหลายชนิด (ไวรัส โปรโตซัว และไส้เดือนฝอย) ถูกฉีดเข้าไปในเส้นเลือดฝอยของโฮสต์ที่มีกระดูกสันหลังได้โดยตรง [60]

3.2.2. ยุงที่มีความสำคัญทางการแพทย์และสัตวแพทย์

โรคที่มียุงเป็นพาหะ เช่น มาลาเรีย โรคเท้าช้าง ไข้เลือดออก โรคชิคุนกุนยา ซิกา และไข้เวสต์ไนล์ แสดงถึงปัญหาทางการแพทย์และสัตวแพทย์ที่สำคัญทั่วโลก และนำไปสู่ปัญหาเศรษฐกิจที่สำคัญ [61] ตารางที่ 3 สรุปโรคที่มียุงเป็นพาหะร้ายแรงที่สุดบางโรค [59]

3.2.3. Wolbachia และยุง

ท่ามกลาง Culicidae, สองประเภท Wolbachia การติดเชื้อสามารถแยกแยะได้: ธรรมชาติ Wolbachia การติดเชื้อและสายการแพร่เชื้อของยุง

(1) การติดเชื้อ Wolbachia ธรรมชาติ. ความสนใจใน Wolbachia สกุลได้ต่ออายุเมื่อการเชื่อมต่อทางชีวภาพระหว่างความไม่ลงรอยกันของไซโตพลาสซึมและ Wolbachia การติดเชื้อเกิดขึ้นและบันทึกโดย Yen & Barr [55] ในช่วงต้นทศวรรษ 1970 ต่อมา เยน [62] รายงานว่ามี Wolbachia ภายในรังไข่และไข่ของสมาชิกยุงของ ยุงลาย scutellaris กลุ่ม (Aedes คุกกี้, ยุงลาย, ยุงลาย albopictus, และ แม่น้ำอีเดส). ในปี 2545 ขณะทำการคัดกรองยุงหลายสายพันธุ์ Ricci et al. [63] พบสัตว์ขาปล้องสายพันธุ์ Wolbachia ใน คูเล็ก โมเดตัส, คูเล็กซ์ ปิเปียนส์, และ Coquillettidia richiardiiในขณะที่ยุงอีกสามตัว (Aedes cinereus, ขยะมูลฝอย และ เอ๋. พันธุกรรม) ติดเชื้อ filarial สายพันธุ์ที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้จาก Dirofilaria immitisและยุงสองตัว (ยุงลาย และ คูเล็กซ์ ทอเรนเซียม) เป็นบวกสำหรับทั้งสายพันธุ์อาร์โทรพอดและฟิลาเรีย ต่อมาการพัฒนา PCR และเทคนิคการเรียงลำดับได้นำไปสู่การค้นพบอื่น ๆ อีกมากมาย Wolbachia จากยุงหลายสายพันธุ์

การวิเคราะห์เมตาล่าสุดของการกระจายของ Wolbachia ในยุงระบุว่า ยุง 185 ตัว คัดกรอง 31.4% เป็น Wolbachia-ติดเชื้อแต่ยังแสดงให้เห็นการกระจายแบบไม่สุ่มของ Wolbachia ท่ามกลางแท็กซ่ายุงต่างๆ [64] อย่างแท้จริง, Wolbachia พบในยุง 39.5% ของ 147 สายพันธุ์ที่คัดกรอง แต่ไม่พบใน เอ๋. อียิปต์ซึ่งเป็นพาหะหลักของไวรัสไข้เลือดออก ชิคุนกุนยา และซิกา [9, 64] นอกจากนี้ ก่อนปี 2557 ไม่ใช่ Wolbachia การติดเชื้อได้รับการบันทึกไว้ใน 38 อะโนฟีลีน รวมทั้งพาหะนำโรคมาเลเรียที่สำคัญหลายชนิด (หนึ่ง. แกมเบีย, หนึ่ง. อาราเบียนซิส, หนึ่ง. funestus, หนึ่ง. stephensi, หนึ่ง. การทำอาหาร, หนึ่ง. dirus, หนึ่ง. อัลบิมานัส และ หนึ่ง. ที่รัก) ซึ่งทำให้คนก่อนเชื่อว่า Wolbachia ไม่สามารถแพร่เชื้อได้ ยุงก้นปล่อง จนกระทั่งค้นพบล่าสุดในประชากรธรรมชาติของ ยุงก้นปล่อง gambiae และ ยุงก้นปล่อง coluzzii ในบูร์กินาฟาโซ [21, 65] และในมาลี (Gomes et al. 2017) ล่าสุด Ayala et al. [66] และเจฟฟรีส์และคณะ [67] ได้เปิดเผยว่าชาวพื้นเมือง Wolbachia การติดเชื้อกว้างกว่าที่คาดไว้ในหมู่ประชากรกลุ่มอะโนฟีลีนตามธรรมชาติที่มีอย่างน้อย 16 สปีชีส์ที่ติดเชื้อตามธรรมชาติ (ตารางที่ 4) นอกจากนี้ Ayala และคณะ [66] เผยให้เห็นความหลากหลายของ Wolbachia สายพันธุ์ในประชากรอะโนฟีลีนป่า ซึ่งมีโอกาสที่คาดไม่ถึงในการค้นพบฟีโนไทป์ที่เหมาะสมในการยับยั้ง พลาสโมเดียม การส่งและ/หรือเพื่อจัดการ ยุงก้นปล่อง การสืบพันธุ์และลดภาระโรคมาลาเรียในแอฟริกา [66]

(2) การติดเชื้อจากยุง. การไม่มีการติดเชื้อตามธรรมชาติในพาหะนำโรคบางชนิดเป็นปัจจัยจำกัดศักยภาพการใช้งานของ Wolbachia เพื่อควบคุมพาหะนำโรคและโรคที่พวกมันแพร่ระบาด ความสามารถของแบคทีเรียในการปรับตัวให้เข้ากับสภาพแวดล้อมภายในเซลล์ใหม่ได้ถูกนำมาใช้เพื่อถ่ายทอดสายพันธุ์พาหะนำโรคที่มีความสำคัญทางการแพทย์และสัตวแพทย์ [9] การติดเชื้อทรานส์อินเฟกชันโดยการฉีดไมโครอินเจคชันของตัวอ่อนในการถ่ายโอนหลาย ๆ ตัว Wolbachia สายพันธุ์เข้า เอ๋. อัลโบปิกตัส [64] และ เอ๋. อียิปต์. ตัวอย่างเช่น ความเครียดที่ทำให้อายุสั้นลงของ Wolbachia (wMelPop-CLA) จาก แมลงหวี่ melanogaster ได้รับการแนะนำอย่างประสบความสำเร็จและมั่นคงใน เอ๋. อียิปต์ เพื่อลดอายุขัยของมัน จากข้อพิสูจน์ว่าสายพันธุ์ wMelPop สามารถป้องกันไวรัส RNA ในแมลงหวี่ได้ อนุพันธ์ของมันถูกใช้เพื่อป้องกันไข้เลือดออก โรคชิคุนกุนยาที่แพร่เชื้อโดย เอ๋. อียิปต์ในขณะที่ wMel Wolbachia สายพันธุ์ (wMel_Br) ถูกนำมาใช้อย่างประสบความสำเร็จในการป้องกันการติดเชื้อซิก้าในบราซิล [69, 70] ตรงกันข้ามกับความซับซ้อน Wolbachia-Arbovirus vectors มุมมองปัจจุบันเกี่ยวกับผลกระทบของ Wolbachia บน พลาสโมเดียม การติดเชื้อเกือบทั้งหมดขึ้นอยู่กับแบบจำลองยุงที่ถ่ายแบบเทียม [71] ใน ยุงก้นปล่อง อนุวงศ์, Wolbachia การแพร่เชื้อประสบความสำเร็จใน ยุงก้นปล่อง gambiae [72, 73] และใน ยุงก้นปล่อง stephensi [74] ตามลำดับ พาหะหลักของโรคมาลาเรียในมนุษย์ในแอฟริกาและตะวันออกกลาง และเอเชียใต้ [75, 76]

3.2.4. แนวทางการควบคุมพาหะสำหรับการควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะ

ในศตวรรษที่ผ่านมา มีความก้าวหน้าอย่างมากในการควบคุมโรคที่เกิดจากพาหะนำโรคหลัก มาลาเรียหายไปจากซีกโลกเหนือ โรคต่างๆ เช่น ไข้รากสาดใหญ่ บาร์โตเนลลา และไข้เหลืองแพร่หลายลดลงอย่างมากในหลายประเทศด้วยวิธีการควบคุมพาหะนำโรคที่มีประสิทธิภาพ [9] แม้จะประสบความสำเร็จเหล่านี้ แต่ในปัจจุบันยังไม่มีวัคซีนที่มีประสิทธิภาพสำหรับโรคไข้เลือดออก โรคเท้าช้าง หรือโรคมาลาเรีย และการรักษาเฉพาะทางจะใช้ได้เฉพาะกับมาลาเรียและโรคเท้าช้างบางชนิดเท่านั้น ในอดีตและปัจจุบัน การกำหนดเป้าหมายยุงพาหะเป็นกลยุทธ์สำคัญในการควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะ การควบคุมพาหะเป็นองค์ประกอบสำคัญของการป้องกันและควบคุมโรคที่มียุงเป็นพาหะ จุดมุ่งหมายคือเพื่อขัดขวางหรือขจัดการแพร่กระจายในท้องถิ่นหรือลดความเปราะบางต่อโรคและป้องกันการติดเชื้อทุติยภูมิจากโรคที่แนะนำและป้องกันการระบาด ก่อนสงครามโลกครั้งที่สอง การควบคุมพาหะนำโรคมีพื้นฐานมาจากการควบคุมสิ่งแวดล้อมของการเพิ่มจำนวนยุง [3] ที่เรียกว่า “ระยะเคมี” จากนั้นเริ่มต้นด้วยดีดีทีและสารกำจัดศัตรูพืชออร์กาโนคลอรีนอื่นๆ ในช่วงปลายทศวรรษ 1940 ในช่วงเวลานี้ การฉีดพ่นพื้นผิวในร่มของบ้านเรือนและที่พักอาศัยในวงกว้างทำให้จำนวนยุงและแมลงอื่นๆ ลดลงอย่างมาก และนำไปสู่การกำจัดโรคมาลาเรียได้สำเร็จในสหรัฐอเมริกา ประเทศในยุโรป สหภาพโซเวียต เอเชียตะวันออกเฉียงใต้ อินเดีย และอเมริกาใต้ [4, 77]. แต่โครงการกำจัดโรคมาลาเรียล้มเหลวในพื้นที่นำร่องโรคมาลาเรียหลายแห่งในทวีปแอฟริกา เนื่องมาจากความหลากหลายทางสายพันธุ์ของมาลาเรียและพฤติกรรมพาหะนำโรคที่สูงมาก [78] อย่างไรก็ตาม ในช่วงทศวรรษที่ผ่านมา มีการให้ความสำคัญกับการควบคุมพาหะนำโรคไปทั่วโลกด้วยการใช้สารเคลือบ (LLINs) และวัสดุฉีดพ่น (IRS) อย่างแพร่หลาย โดยเฉพาะอย่างยิ่งกับพาหะนำโรคมาลาเรีย การแจกจ่ายตามชุมชนขนาดใหญ่และ/หรือแคมเปญของ IRS ได้นำไปสู่ความครอบคลุมด้าน ITN และ IRS ที่มีนัยสำคัญในหลายประเทศในแอฟริกา ส่งผลให้ความชุกของโรคมาลาเรียในภูมิภาคนั้นลดลงอย่างมาก [3] อย่างไรก็ตาม เพื่อให้การควบคุมพาหะนำโรคมีประสิทธิภาพมากขึ้น คุ้มราคา เป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อม และยั่งยืน WHO ได้นำกรอบยุทธศาสตร์ระดับโลกด้านการจัดการเวกเตอร์แบบบูรณาการ (IVM) มาใช้ในปี 2547 เป็นก้าวแรกสู่การค้นหาและการนำแนวทางใหม่ในการควบคุมเวกเตอร์และ โรคติดต่อ [3]. กำหนดเป็น "กระบวนการตัดสินใจที่มีเหตุผลสำหรับการใช้ทรัพยากรที่เหมาะสมที่สุดสำหรับการควบคุมพาหะ" IVM ไม่ใช่แนวคิดใหม่เนื่องจากมีการใช้หลักการพื้นฐานในช่วงศตวรรษที่ผ่านมาในสหรัฐอเมริกาผ่านเครือข่ายขนาดใหญ่ของเขตกำจัดยุง ปกป้องผู้คนจากการถูกยุงกัดและพาหะนำโรค [79] เมื่อเร็ว ๆ นี้ WHO เรียกร้องให้มีการเสริมสร้างความเข้มแข็งของ IVM ให้เป็นหนึ่งในพื้นที่ยุทธศาสตร์สำหรับการดำเนินการในกรอบแผนระดับโลกเพื่อต่อสู้กับโรคเขตร้อนที่ถูกละเลยสำหรับปี 2551-2558

แม้ว่ายาฆ่าแมลงจะประสบความสำเร็จในการควบคุมพาหะนำโรค แต่มาตรฐานการป้องกันทางนิเวศวิทยาและสิ่งแวดล้อมในปัจจุบันทำให้กลยุทธ์ที่ใช้สารกำจัดแมลงไม่ยั่งยืน เนื่องจากผลกระทบของยาฆ่าแมลงหลายชนิดต่อสายพันธุ์ที่ไม่ใช่เป้าหมาย ผลกระทบต่อสิ่งแวดล้อม การปนเปื้อนของดินและน้ำ และการพัฒนากระบวนการคัดเลือก และต่อมายุงต้านทานต่อยาฆ่าแมลง [1]. นอกจากนี้ เครื่องมือป้องกันและควบคุมโรคมาลาเรียที่มีอยู่ในปัจจุบันมีราคาค่อนข้างสูง ในขณะที่การจัดการพาหะนำโรค arbovirus ยังต้องเผชิญกับความท้าทายที่สำคัญ เนื่องจากลักษณะเฉพาะของ ยุงลาย เวกเตอร์ซึ่งมีลักษณะเป็นพลาสติกทางสรีรวิทยาและนิเวศวิทยาขนาดใหญ่ทำให้ควบคุมได้ยาก [80] ความต้านทานยาฆ่าแมลงในวงกว้างได้พัฒนาขึ้นใน คูเล็กซ์ สกุลที่เกี่ยวข้องกับทั้งกลไก “เมตาบอลิซึม” (เอสเทอเรสที่ปรับปรุงแล้ว กลูตาไธโอน-S-transferase หรือ p450 monooxygenase) และกลไก “ไซต์เป้าหมาย” (การดัดแปลงของกลไกรับ GABA หรือช่องโซเดียม) [81] ดังนั้นจึงมีความจำเป็นเร่งด่วนสำหรับกลยุทธ์การควบคุมพาหะนำโรคทางเลือกที่มีประสิทธิภาพ ซึ่งสามารถใช้ได้ในวงกว้างและเป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อม สิ่งนี้มีความสำคัญอย่างยิ่งต่อความพยายามในการควบคุมอย่างยั่งยืนและเพื่อให้บรรลุเป้าหมายในการกำจัดโรคมาลาเรีย ทางเลือกที่เป็นไปได้หรือกลยุทธ์เสริมสำหรับการแทรกแซงหลักในปัจจุบัน ได้แก่ แนวทางการควบคุมทางพันธุกรรม การใช้ยุงที่ทนไฟเพื่อทดแทนประชากรพาหะ หรือการปลดปล่อยยุงที่มียีนอันตรายถึงชีวิตเพื่อกดขี่ประชากรเป้าหมาย [1] นอกจากยุงแปลงพันธุ์แล้ว วิธีการควบคุมพาราทรานส์จีนและชีวภาพยังให้ความเป็นไปได้ที่เป็นรูปธรรมสำหรับกลยุทธ์การควบคุมพาหะที่เป็นนวัตกรรมใหม่ [7]

3.2.5. การควบคุมทางชีวภาพของโรคที่มียุงเป็นพาหะ

นอกเหนือจากแนวทาง VC ของ paratransgenic โดยใช้ประโยชน์จาก microbiota ของยุงโดยธรรมชาติ/ที่แพร่เชื้อและกำหนดเป็นการใช้สิ่งมีชีวิตที่มีชีวิตแบบพึ่งพาอาศัยกันซึ่งอาศัยอยู่ตามธรรมชาติหรือประสบความสำเร็จในการนำยุงเข้าสู่ยุงเพื่อส่งโมเลกุลเอฟเฟกต์เพื่อยับยั้ง แข่งขัน หรือฆ่าเชื้อเชื้อโรคในแมลง [1, 9], การใช้ประโยชน์เพื่อขัดขวางหรือปรับภูมิคุ้มกันของเวกเตอร์ต่อเชื้อโรคโดยตรงถือเป็นแนวทางทางชีวภาพในการควบคุม MBD Durvasula et al. แสดงให้เห็นถึงความเป็นไปได้ของแนวทาง paratransgenic [82] เมื่อพวกเขาประสบความสำเร็จในการแปลง symbiont commensal ในรูมหลังของ Rhodnius prolixus, Rhodococcus rhodniiเพื่อแสดงโปรตีน cecropin A เพื่อฆ่าสาเหตุของโรค Chagas และ Trypanosoma cruzi ภายในโฮสต์ของพวกเขา ในทำนองเดียวกัน ล่าสุดใช้ life-shortening Wolbachia สายพันธุ์ wMelPop-CLA เป็นโหมโรงสำหรับแนวทางทางชีวภาพที่เป็นนวัตกรรมใหม่ในการควบคุม MBD แท้จริงแล้วแบคทีเรียภายในเซลล์เช่น Wolbachia ที่สามารถจัดการกับชีววิทยาของโฮสต์ รวมทั้งระบบภูมิคุ้มกัน ถือเป็นแนวทางใหม่ในการควบคุมทางชีวภาพที่มีแนวโน้มว่าจะควบคุมโรคติดต่อจากแมลง ดังนั้น งานวิจัยหลายชิ้นจึงพยายามแสดงศักยภาพของ Wolbachia เพื่อใช้ในยุทธศาสตร์ดังกล่าวเพื่อควบคุมโรคติดต่อจากยุง [74] Wolbachia มีลักษณะหลายประการ รวมถึงความสามารถในการรบกวนนิเวศวิทยา พฤติกรรม และสรีรวิทยาของแมลง ทำให้เป็นหนึ่งในตัวเลือกที่ดีที่สุดสำหรับการปิดกั้น หรืออย่างน้อยก็ช่วยลดการแพร่กระจายของเชื้อโรคที่มีความสำคัญทางการแพทย์และสัตวแพทย์ [21] อย่างไรก็ตาม ก่อนการดำเนินการใด ๆ Wolbachiaแนวทางที่อิงตาม เงื่อนไขเบื้องต้นที่สำคัญคือต้องระบุลักษณะที่เป็นไปได้ของสายพันธุ์และฟีโนไทป์การจัดการโฮสต์ทั้งหมดให้ดีขึ้น ซึ่งจะทำให้เป็นตัวแทนควบคุมทางชีวภาพที่ดี พัฒนาแบบจำลองการคาดการณ์ และดำเนินการประเมินความเสี่ยงที่ครอบคลุมสำหรับการใช้เพื่อควบคุมยุง และโรคที่แพร่ระบาด ตามที่กล่าวไว้ก่อนหน้านี้ Wolbachia-เทคโนโลยีการทรานส์อินเฟกชันได้แสดงให้เห็นแล้วในการควบคุมการส่งผ่านอาร์โบไวรัสโดย เอ๋. อียิปต์ ใช้ต่างกัน Wolbachia สายพันธุ์ที่สามารถทำให้อายุขัยของเวกเตอร์สั้นลง จำกัดความไวต่อการติดเชื้อ และทำให้เกิดความไม่ลงรอยกันของไซโตพลาสซึมเพื่อลดความหนาแน่นของเวกเตอร์ นอกจากนี้ ใน หนึ่ง. แกมเบีย และ หนึ่ง. stephensi, การปรากฏตัวของ Wolbachia ดูเหมือนจะส่งผลเสียต่อ พลาสโมเดียม วัฏจักรพัฒนาการและการวางไข่ [21, 74, 83] แม้ว่าอาจมีคุณสมบัติเป็นอาวุธนวัตกรรม แต่ความรู้ของเราเกี่ยวกับ Wolbachia- กลไกการต่อต้านปรสิตที่เป็นสื่อกลางนั้นกระจัดกระจาย หากไม่ขาดอย่างสมบูรณ์ ความล่าช้าอย่างมีนัยสำคัญในการตายของไวรัสที่ทำให้เกิดโรค Drosophila C, Cricket paralysis และ Flock House virus มีความเกี่ยวข้องกับการปรากฏตัวของ Wolbachia ในโฮสต์ จอห์นสันตั้งสมมติฐานว่าโดยการลดปริมาณไวรัส Wolbachia เอนโดซิมบิออนช่วยเพิ่มการอยู่รอดของโฮสต์ [84] อย่างไรก็ตามเนื่องจากแตกต่างกัน Wolbachia สายพันธุ์ส่งผลกระทบต่อไวรัสแมลงหลายชนิด ซึ่งน่าจะบ่งชี้ว่ากลไกที่อยู่ภายใต้ไม่จำเพาะต่อเชื้อโรค/Wolbachia ปฏิสัมพันธ์แต่เกี่ยวข้องกับกระบวนการที่กว้างโดยสมมุติฐานซึ่งกำหนดเป้าหมายไปยังไวรัสประเภทต่างๆ รวมถึงการแข่งขันเพื่อทรัพยากรและการควบคุมการตอบสนองทางภูมิคุ้มกันของโฮสต์

(1) วอลบาเคีย-แนวทางในการควบคุมโรคอาร์โบไวรัส. ยุคใหม่สำหรับการควบคุม arboviruses เริ่มต้นด้วยการนำ wMelPop-CLA ที่ทำให้อายุสั้นลงอย่างประสบความสำเร็จ Wolbachia ความเครียดเข้า เอ๋. อียิปต์ เพื่อลดอายุขัยของประชากรตามธรรมชาติ [85, 86] ข้อมูลเบื้องต้นที่รวบรวมจากการทดลองภาคสนามในออสเตรเลียทำให้สามารถตรวจสอบแบบจำลองทางทฤษฎีสำหรับ Wolbachia พลวัตของประชากรและได้แสดงให้เห็นถึงความเป็นไปได้และความยั่งยืนของกลยุทธ์ดังกล่าวในการควบคุมประชากรยุงและโรคที่พวกมันแพร่ระบาด [87] อย่างไรก็ตาม อุปสรรคในการแพร่กระจายทำให้เกิดการแพร่กระจายที่ช้ากว่าที่คาดการณ์ไว้ของทรานส์ติดเชื้อ ยุงลาย ยุงในแคนส์ (ออสเตรเลีย) [88] ควรนำมาพิจารณาในการเผยแพร่ในอนาคต นอกจากนี้อย่างไร Wolbachia สายพันธุ์ที่น่าสนใจรบกวนเชื้อโรคเป็นประเด็นสำคัญที่ต้องทำความเข้าใจให้ดีขึ้นเมื่อต้องรับมือกับ Wolbachia- วิธีการตาม ผู้เขียนหลายคนพยายามที่จะคลี่คลายพื้นฐานของ Wolbachia การปิดกั้นเชื้อโรค เพื่อจุดประสงค์นั้น Terradas และ McGraw ได้หารือเกี่ยวกับพื้นฐานกลไกที่เป็นไปได้ของ Wolbachia-ไกล่เกลี่ยการสกัดกั้นเชื้อโรคและได้ประเมินการมีอยู่ของหลักฐานจากยุงในทุ่งและแมลงที่เกี่ยวข้อง [89] พบว่าปริมาณของ Wolbachia ภายในเซลล์เจ้าบ้านและเนื้อเยื่อดูเหมือนจะสัมพันธ์กับความแข็งแรงของ Wolbachia- การปิดกั้นแบบสื่อกลาง พวกเขาเปิดเผยว่าการทำซ้ำสูง Wolbachia ความเครียด (wMelPop) โดยการแสดงภาระของเซลล์จำนวนมากทำให้เกิดความเสียหายของเนื้อเยื่อจึงทำให้เกิดการปิดกั้นที่สมบูรณ์แบบใน เอ๋. อียิปต์ [89]. อีกโหมดหนึ่งของการดำเนินการที่เป็นไปได้ซึ่ง Wolbachia การแทรกแซงการติดเชื้อของเชื้อโรคคือโดยการเตรียมระบบภูมิคุ้มกันของโฮสต์ด้วยการกระตุ้นการตอบสนองของภูมิคุ้มกันซึ่งในทางทฤษฎีแล้วจะปกป้องแมลงจากเชื้อโรคต่างๆ การควบคุมยีนเป็นอีกวิธีหนึ่งโดยที่ Wolbachia ปรับระบบภูมิคุ้มกันของโฮสต์ตามที่แสดงโดยการศึกษาล่าสุดเกี่ยวกับบทบาทที่เป็นไปได้ของโปรตีน Vago ในเส้นทางภูมิคุ้มกันโดยธรรมชาติของ Culex quinquefasciatus และ เอ๋. อียิปต์ เพื่อจำกัดการจำลองแบบเวสต์ไนล์และไวรัสไข้เลือดออก [90] ตัวอย่างเช่น Asad และคณะ ได้แสดงให้เห็นว่าใน Wolbachia- เซลล์ที่ติดเชื้อ การทำให้ยีน Vago1 ล้มลง ทำให้การจำลอง DENV เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญโดยไม่มีผลกระทบ Wolbachia ความหนาแน่น และสรุปว่าใน เอ๋. อียิปต์ การเหนี่ยวนำของโปรตีน AeVago1 ไกล่เกลี่ยโดย Wolbachia ในเซลล์ที่ติดเชื้อ อาจทำหน้าที่เป็นปัจจัยโฮสต์ในการยับยั้งการจำลองแบบ DENV [90]

(2) วอลบาเคีย-แนวทางพื้นฐานในการควบคุมโรคมาลาเรีย. ตามที่ได้รายงานไปในคราวที่แล้ว รายงานโรคมาลาเรียโลก ประจำปี 2560แม้จะมีความคืบหน้าอย่างมีนัยสำคัญตั้งแต่ปี 2000 อัตราการลดลงของโรคมาลาเรียได้หยุดชะงักและแม้กระทั่งกลับด้านในบางภูมิภาคตั้งแต่ปี 2014 [91] เหตุผลคือการแพร่กระจายของความต้านทานปรสิตต่อยาต้านมาเลเรียและพาหะนำโรคไปสู่ยาฆ่าแมลง [4] นอกเหนือจากการดำเนินการตรวจสอบการดื้อยาฆ่าแมลงเชิงกลยุทธ์สำหรับประเทศที่มีเชื้อมาลาเรียเฉพาะถิ่นแล้ว แผนระดับโลกของ WHO สำหรับการจัดการการดื้อยาฆ่าแมลงในพาหะนำโรคมาลาเรีย (GPIRM) ยังเน้นย้ำถึงความจำเป็นในการพัฒนาแนวทางนวัตกรรมสำหรับการควบคุมพาหะนำโรคอย่างยั่งยืนในระดับโลก [92] ในการตอบสนองต่อเรื่องนั้น ไมโครไบโอตาของยุงจึงได้รับความสนใจและผลกระทบที่อาจเกิดขึ้นต่อสมรรถภาพของโฮสต์และวิวัฒนาการของปรสิต [93] Wolbachia- การแทรกแซงของปรสิตในระบบแมลงอื่น ๆ ได้เพิ่มความเป็นไปได้ที่น่าตื่นเต้นในการใช้พวกมันเพื่อควบคุมหรือจำกัดการแพร่กระจายของโรคมาลาเรีย อย่างไรก็ตาม การพัฒนาของ Wolbachiaกลยุทธ์การใช้ยาต้านมาเลเรียถูกขัดขวางโดยการขาดความเสถียร Wolbachia การติดเชื้อในประชากรยุงก้นปล่องตามธรรมชาติ เช่นเดียวกับความล้มเหลวในการสร้างการถ่ายทอดทางพันธุกรรมที่คงที่ในยุงก้นปล่อง ทั้งสองประเด็นนี้ได้รับการแก้ไขแล้วด้วยการจัดตั้งคอกม้าที่ประสบความสำเร็จ Wolbachia การติดเชื้อ wAlbB สายพันธุ์ใน ยุงก้นปล่อง stephensi, พาหะนำโรคมาลาเรียที่สำคัญในเอเชีย [74] และรายงานล่าสุดของคอกม้า Wolbachia การติดเชื้อในประชากรตามธรรมชาติของพาหะนำโรคมาลาเรียที่สำคัญสองชนิด ยุงก้นปล่อง gambiae และ ยุงก้นปล่อง coluzziiในบูร์กินาฟาโซ [65]. นอกจากนี้ Shaw และคณะ แสดงให้เห็นว่า วังกะ ความเครียดติดเชื้อในเนื้อเยื่อสืบพันธุ์ (รังไข่) อย่างเสถียร และเนื้อเยื่อร่างกายที่ พลาสโมเดียม การพัฒนาเกิดขึ้น และอาจแข่งขันกันอย่างมีประสิทธิภาพเพื่อทรัพยากรหรือควบคุมการตอบสนองของภูมิคุ้มกันเพื่อฆ่าปรสิตมาลาเรียอย่างมีประสิทธิภาพ [21] มีการรายงานผลลัพธ์ที่คล้ายกันเมื่อเร็ว ๆ นี้ในมาลีด้วยอะโนฟีลีนใหม่ Wolbachia ความเครียด (วังกะ-มะลิ) [83]. ที่น่าสนใจคือการทดลองการติดเชื้อพบว่า วังกะ-มาลีมีผลกระทบอย่างมากต่อระยะสปอโรซอยต์ตอนปลายและลดการแพร่เชื้อมาลาเรีย [83] การศึกษาทั้งสองแสดงศักยภาพในการปล่อย Wolbachia- ยุงที่ติดเชื้อเป็นกลยุทธ์ที่มีแนวโน้มว่าจะลดการแพร่เชื้อมาลาเรีย แต่ยังเพิ่มข้อจำกัดอย่างมากเนื่องจากขาดความเข้ากันไม่ได้ของไซโตพลาสซึมที่ชัดเจนอย่างชัดเจน [21] เพื่อให้แน่ใจว่าประชากรได้รับการปล่อยตัวเพื่อการยังชีพในธรรมชาติ การค้นพบล่าสุดของ Native Wolbachia การติดเชื้อในแอฟริกา 16 จาก 25 ตัว ยุงก้นปล่อง สายพันธุ์รวมทั้งพาหะนำโรคและไม่ใช่เวกเตอร์ของมาลาเรียยืนยันว่าเป็นธรรมชาติ Wolbachia การติดเชื้อในยุงลายอะโนฟีลีนพบได้บ่อยเกินคาด [66, 67] นี่เป็นโอกาสที่ไม่เคยมีมาก่อนในการศึกษาเพิ่มเติมเกี่ยวกับความหลากหลายของอะนอฟีลีน Wolbachia สายพันธุ์เพื่อระบุฟีโนไทป์ที่เหมาะสมตามธรรมชาติขัดขวางการพัฒนาของ พลาสโมเดียม ปรสิตในยุงโดยเฉพาะอย่างยิ่งในหมู่ Wolbachia สายพันธุ์ที่เกี่ยวข้องกับพาหะนำโรคที่ไม่ใช่มาลาเรีย

4. บทสรุปและทิศทางในอนาคต

การทบทวนนี้กล่าวถึงสถานะปัจจุบันของความรู้เกี่ยวกับความสัมพันธ์ระหว่างยุงกับ Wolbachiaโดยเน้นที่ข้อจำกัดของกลยุทธ์การควบคุมยุงแบบต่างๆ และการใช้ไมโครไบโอตาทั่วไป/แนะนำของยุงเป็นการแทรกแซง VC ที่เป็นนวัตกรรมใหม่เพื่อป้องกันโรคที่มียุงเป็นพาหะ

โดยสรุป (1) โรคต่างๆ ของมนุษย์ สัตว์ และจากสัตว์สู่คนเป็นโรคติดต่อโดยยุงของ ยุงก้นปล่อง, ยุงลาย และ คูเล็กซ์ จำพวก เครื่องมือ/กลยุทธ์ในการควบคุมพาหะนำโรคโดยยาฆ่าแมลงเป็นองค์ประกอบสำคัญในการต่อสู้กับโรคที่มียุงเป็นพาหะหลัก (2) การเพิ่มขึ้นของโรคที่มียุงเป็นพาหะ เช่น มาลาเรีย ไข้เหลือง ไข้เลือดออก โรคชิคุนกุนยา และไข้ซิกา และการแพร่กระจายของปรสิตที่ดื้อยาและยุงสายพันธุ์ที่ดื้อยาฆ่าแมลง คุกคามความยั่งยืนของวิธีการควบคุมในปัจจุบันและเน้นที่ ความจำเป็นเร่งด่วนในการพัฒนาวิธีการควบคุมเพิ่มเติมสำหรับโรคที่มียุงเป็นพาหะ (3) Wolbachia เป็นหนึ่งในสัญลักษณ์ยุงที่มีแนวโน้มมากที่สุดสำหรับแนวทางการควบคุมเวกเตอร์ที่เป็นนวัตกรรมใหม่ Wolbachia มีลักษณะหลายประการที่สามารถใช้ในกลยุทธ์ดังกล่าวเพื่อลดสมรรถภาพของโฮสต์และแข่งขันหรือฆ่าเชื้อโรคได้ (4) Wolbachia ถูกค้นพบครั้งแรกในปี 1924 และบรรยายในปี 1936 โดย Marshall Hertig และ S. Burt Wolbach ในอวัยวะสืบพันธุ์ของ Culex pipiens. ธรรมชาติของ “โรคระบาด” ของ Wolbachia เป็นผลมาจากความสามารถในการจัดการกับการขยายพันธุ์ของโฮสต์และการเคลื่อนที่ในแนวนอนข้ามพรมแดนของสายพันธุ์ (5) ประมาณ 31.4% ของยุงสายพันธุ์ตามธรรมชาติอาศัยอยู่หนึ่งหรือหลายตัว Wolbachia สายพันธุ์ ยิ่งไปกว่านั้น ปัจจุบันสามารถแพร่เชื้อยุงเวกเตอร์สายพันธุ์ที่มีความสำคัญทางการแพทย์และสัตวแพทย์ได้อย่างมีเสถียรภาพด้วย non-native Wolbachia สายพันธุ์ที่สามารถทำให้อายุขัยของเวกเตอร์สั้นลง จำกัดความไวต่อการติดเชื้อ หรือทำให้เกิดความไม่ลงรอยกันของไซโตพลาสซึมเพื่อลดความหนาแน่นของเวกเตอร์ (6) Wolbachiaแนวทางที่เป็นพื้นฐานเป็นกลยุทธ์ที่เป็นนวัตกรรมใหม่สำหรับการควบคุมพาหะนำโรคของยุง อย่างไรก็ตาม ความรู้ของเราเกี่ยวกับ Wolbachiaกลไกการต่อต้านปรสิตที่เป็นสื่อกลางจะกระจัดกระจายหากไม่ขาดไปทั้งหมด (7) จำเป็นต้องมีการศึกษาเพิ่มเติม รวมทั้งการทดลองในห้องปฏิบัติการ การทดลองกึ่งสนาม และการทดลองภาคสนามเกี่ยวกับยุงพาหะหลายสายพันธุ์ในประชากรทางภูมิศาสตร์ที่แตกต่างกันอย่างเร่งด่วนเพื่อให้เข้าใจมากขึ้น Wolbachia- อาศัยกลไกต่อต้านปรสิตและปฏิสัมพันธ์ระหว่างโฮสต์และปรสิต แต่ยังให้ข้อมูลเชิงประจักษ์เพื่อทดสอบแบบจำลองทางทฤษฎีสำหรับ Wolbachia พลวัตของประชากรและแสดงให้เห็นถึงความเป็นไปได้และความยั่งยืนของ Wolbachiaวิธีการตามแนวทางในการควบคุมยุงและโรคที่พวกมันแพร่ระบาด

ผลประโยชน์ทับซ้อน

ผู้เขียนขอประกาศว่าไม่มีความขัดแย้งทางผลประโยชน์เกี่ยวกับการตีพิมพ์บทความนี้

รับทราบ

ผู้เขียนขอขอบคุณ Dr Florian M. Steiner บรรณาธิการหัวหน้า Myrmecological News Journal และ Dr Jacob A. Russell จาก Drexel University ที่อนุญาตให้ทำซ้ำรูปที่ 1 ของ Myrmecology News 16: 7-23

อ้างอิง

  1. A.B.B. Wilke และ M.T. Marrelli, “Paratransgenesis: กลยุทธ์ใหม่ที่มีแนวโน้มสำหรับการควบคุมพาหะของยุง” Parasites & Vectorsฉบับที่ 8 ไม่ 1, 2015. ดูได้ที่: Google Scholar
  2. เอ็ม. เอส. มุลลา “แล้วยุงก็ควบคุม ตอนนี้ และในอนาคต” วารสารสมาคมควบคุมยุงแห่งอเมริกาฉบับที่ 10 ไม่ 4, หน้า 574-575, 1994. ดูที่: Google Scholar
  3. ใคร, คู่มือสำหรับการจัดการเวกเตอร์แบบบูรณาการ, WHO Press, เจนีวา, สวิตเซอร์แลนด์, 2556.
  4. S. Sougoufara, S. Doucouré, P. M. B. Sembéne, M. Harry และ C. Sokhna, “ความท้าทายในการควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรียในอนุภูมิภาคทะเลทรายซาฮารา: การต่อต้านและการปรับตัวเชิงพฤติกรรมในประชากรยุงก้นปล่อง” วารสารโรคที่เกิดจากพาหะนำโรคฉบับที่ 54 หมายเลข 1, pp. 4–15, 2017. ดูที่: Google Scholar
  5. คุณกรรณมรธี และ ส.เสบสัน, “การดื้อยาฆ่าแมลงในแมลงพาหะนำโรคโดยเฉพาะยุง: ภัยคุกคามที่อาจเกิดกับสาธารณสุขทั่วโลก” ขอบเขตสุขภาพฉบับที่ 2 ไม่ 1, pp. 4–18, 2013. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  6. H. Alout, P. Labbé, F. Chandre และ A. Cohuet, “การควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรียยังคงมีความสำคัญแม้จะมีการดื้อยาฆ่าแมลง” แนวโน้มในปรสิตวิทยาฉบับที่ 33 ไม่ 8, pp. 610–618, 2017. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  7. M. V. Mancini, R. Spaccapelo, C. Damiani et al., “ Paratransgenesis เพื่อควบคุมพาหะนำโรคมาลาเรีย: การศึกษานำร่องแบบกึ่งสนาม” Parasites & Vectorsฉบับที่ 9 ไม่ 1, 2016. ดูได้ที่: Google Scholar
  8. อี.จี. อับราฮัม, S.-J. Cha และ M. Jacobs-Lorena "สู่การควบคุมทางพันธุกรรมของแมลงพาหะ: ภาพรวม" การวิจัยกีฏวิทยาฉบับที่ 37, ไม่ 4, pp. 213–220, 2007. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  9. W. Takken และ C.J. Koenraadt, นิเวศวิทยาของปฏิสัมพันธ์ระหว่างปรสิตกับเวกเตอร์, Wageningen Academic Publishers, Wageningen, เนเธอร์แลนด์, 2013.
  10. G. L. Grossman, C. S. Rafferty, J. R. Clayton, T. K. Stevens, O. Mukabayire และ M. Q. Benedict, “การเปลี่ยนแปลงทางเจิร์มไลน์ของเวกเตอร์มาลาเรีย, Anopheles gambiae, ด้วยองค์ประกอบ piggyBac transposable” ชีววิทยาโมเลกุลของแมลงฉบับที่ 10 ไม่ 6, pp. 597–604, 2001. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  11. F. Catteruccia, T. Nolan, T. G. Loukeris et al., “การเปลี่ยนแปลงของเจิร์มไลน์ที่เสถียรของยุงก้นปล่องยุงก้นปล่อง” ธรรมชาติฉบับที่ 405 ไม่ใช่ 6789, pp. 959–962, 2000. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  12. F. Catteruccia, J. C. H. Godfray และ A. Crisanti, “ผลกระทบของการดัดแปลงพันธุกรรมต่อสมรรถภาพของยุงก้นปล่องสตีเฟนซี” ศาสตร์ฉบับที่ 299 ไม่ 5610, pp. 1225–1227, 2003. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  13. G. Favia, I. Ricci, C. Damiani et al., “แบคทีเรียในสกุล Asaia เชื่อมโยงกับ Anopheles stephensi ซึ่งเป็นพาหะของยุงมาเลเรียในเอเชีย” การดำเนินการของ National Academy of Sciences แห่งสหรัฐอเมริกาฉบับที่ 104 หมายเลข 21, pp. 9047–9051, 2007. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  14. G. Favia, I. Ricci, M. Marzorati et al., “แบคทีเรียในสกุล asaia: อาวุธดัดแปลงพันธุกรรมที่มีศักยภาพในการต่อต้านมาลาเรีย” ความก้าวหน้าทางเวชศาสตร์ทดลองและชีววิทยาฉบับที่ 627, pp. 49–59, 2008. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  15. E. Schnepf, N. Crickmore, J. Van Rie et al., “Bacillus thuringiensis และโปรตีนคริสตัลของสารกำจัดศัตรูพืช” รีวิวจุลชีววิทยาและอณูชีววิทยาฉบับที่ 62 ไม่ 3, pp. 775–806, 1998. ดูได้ที่: Google Scholar
  16. E. Zchori-Fein, Y. Gottlieb, S. E. Kelly et al., "แบคทีเรียที่ค้นพบใหม่ที่เกี่ยวข้องกับการเกิด parthenogenesis และการเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมการเลือกโฮสต์ในตัวต่อปรสิต" การดำเนินการของ National Academy of Sciences แห่งสหรัฐอเมริกาฉบับที่ 98 ไม่ใช่ 22, pp. 12555–12560, 2001. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  17. S. Zabalou, M. Riegler, M. Theodorakopoulou, C. Stauffer, C. Savakis และ K. Bourtzis, "ความเข้ากันไม่ได้ของไซโตพลาสซึมที่เกิดจาก Wolbachia เป็นวิธีการควบคุมประชากรแมลงศัตรูพืช" การดำเนินการของ National Academy of Sciences แห่งสหรัฐอเมริกาฉบับที่ 101 ไม่ใช่ 42, pp. 15042–15045, 2004. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  18. C. B. Beard, E. M. Dotson, P. M. Pennington, S. Eichler, C. Cordon-Rosales และ R. V. Durvasula, "แบคทีเรีย symbiosis และการควบคุม paratransgenic ของโรค Chagas ที่เป็นพาหะนำโรค" วารสารนานาชาติด้านปรสิตวิทยาฉบับที่ 31 หมายเลข 5-6, pp. 621–627, 2001. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  19. M.A. Riehle และ M. Jacobs-Lorena “การใช้แบคทีเรียเพื่อแสดงและแสดงโมเลกุลต่อต้านปรสิตในยุง: กลยุทธ์ในปัจจุบันและอนาคต” ชีวเคมีของแมลงและอณูชีววิทยาฉบับที่ 35 ไม่ 7, pp. 699–707, 2005. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  20. I. V. Coutinho-Abreu, K. Y. Zhu และ M. Ramalho-Ortigao, “การถ่ายทอดทางพันธุกรรมและการเปลี่ยนถ่ายยีนเพื่อควบคุมโรคที่เกิดจากแมลง: สถานะปัจจุบันและความท้าทายในอนาคต” Parasitology Internationalฉบับที่ 59 หมายเลข 1, pp. 1–8, 2010. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  21. W. R. Shaw, P. Marcenac, L. M. Childs et al., “การติดเชื้อ Wolbachia ในประชากร Anopheles ธรรมชาติส่งผลกระทบต่อการวางไข่และมีความสัมพันธ์เชิงลบกับการพัฒนาของ Plasmodium” การสื่อสารธรรมชาติฉบับที่ 7, 2016. ดูได้ที่: Google Scholar
  22. Y. Ilinsky และ O. E. Kosterin "ความหลากหลายระดับโมเลกุลของ Wolbachia ใน Lepidoptera: เนื้อหาอัลลีลิกที่แพร่หลายและการรวมตัวของยีน MLST สูง" สายวิวัฒนาการโมเลกุลและวิวัฒนาการฉบับที่ 109, pp. 164–179, 2017. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  23. M. Hertig และ S. B. Wolbach, “Studies on Rickettsia-Like Micro-Organisms in Insects” วารสารการวิจัยทางการแพทย์ฉบับที่ 44 หมายเลข 3, หน้า 329–374, 2467. ดูที่: Google Scholar
  24. M. Hertig, “The Rickettsia, Wolbachia pipientis (Gen. Et Sp. N.) and Associated Inclusions of the Mosquito, Culex pipiens” ปรสิตวิทยาฉบับที่ 28 ไม่ 4, pp. 453–486, 1936. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  25. V. B. D. Skerman, V. McGowan และ P. H. A. Sneath, “รายชื่อแบคทีเรียที่อนุมัติ” วารสารนานาชาติด้านแบคทีเรียวิทยาฉบับที่ 30 ไม่ 1, pp. 225–420, 1980. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  26. N. Lo, C. Paraskevopoulos, K. Bourtzis et al., “สถานะทางอนุกรมวิธานของแบคทีเรียภายในเซลล์ Wolbachia pipientis” วารสารนานาชาติจุลชีววิทยาเชิงระบบและวิวัฒนาการฉบับที่ 57, ไม่ 3, pp. 654–657, 2007. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  27. M. Forsman, G. Sandstrom และ A. Sjostedt "การวิเคราะห์ลำดับดีเอ็นเอไรโบโซม 16S ของสายพันธุ์ Francisella และการใช้งานสำหรับการกำหนดสายวิวัฒนาการของสกุลและสำหรับการระบุสายพันธุ์โดย PCR" วารสารนานาชาติด้านแบคทีเรียวิทยาฉบับที่ 44 หมายเลข 1, หน้า 38–46, 1994. ดูได้ที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  28. B. La Scola, C. Bandi และ D. Raoult, “Wolbachia,” in คู่มือระบบ Bergeys ของอาร์เคียและแบคทีเรีย, หน้า 1–12, John Wiley & Sons, Ltd, Chichester, UK, 2015. ดูที่: Google Scholar
  29. F. Fenollar, B. La Scola, H. Inokuma, J. S. Dumler, M. J. Taylor และ D. Raoult, “Culture and Phenotypic Characterization of a Wolbachia pipientis Isolate” วารสารจุลชีววิทยาคลินิกฉบับที่ 41, ไม่ 12, pp. 5434–5441, 2003. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  30. K. Tamura และ M. Nei, “การประเมินจำนวนการแทนที่นิวคลีโอไทด์ในพื้นที่ควบคุมของ DNA ยลในมนุษย์และชิมแปนซี” อณูชีววิทยาและวิวัฒนาการ, 1993. ดูที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  31. S. Kumar และ C. Barillas-Mury “ Midgut peroxidase ที่เกิดจาก Ookinete ทำให้เกิดระเบิดเวลาในยุงก้นปล่อง” ชีวเคมีของแมลงและอณูชีววิทยาฉบับที่ 35 ไม่ 7, pp. 721–727, 2005. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  32. S. T. Ramírez-Puebla, L. E. Servín-Garcidueñas, E. Ormeño-Orrillo et al., “การตอบสนองต่อ Lindsey et al. "Wolbachia pipientis ไม่ควรแบ่งออกเป็นหลายสายพันธุ์: การตอบสนองต่อRamírez-Puebla et al."" จุลชีววิทยาเชิงระบบและประยุกต์ฉบับที่ 39 ไม่มี 3, pp. 223–225, 2016. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  33. A. R. I. Lindsey, S. R. Bordenstein, I. L. G. Newton และ J. L. Rasgon, “Wolbachia pipientis ไม่ควรแบ่งออกเป็นหลายสายพันธุ์: การตอบสนองต่อRamírez-Puebla et al.” จุลชีววิทยาเชิงระบบและประยุกต์ฉบับที่ 39 ไม่มี 3, pp. 220–222, 2016. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  34. E. Glowska, A. Dragun-Damian, M. Dabert และ M. Gerth, “New Wolbachia supergroups ตรวจพบในไรขนนก (Acari: Syringophilidae)” การติดเชื้อ พันธุศาสตร์และวิวัฒนาการฉบับที่ 30, pp. 140–146, 2015. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  35. K. Henkle-Dührsen, VH Eckelt, G. Wildenburg, M. Blaxter และ RD Walter "โครงสร้างยีน กิจกรรม และการแปลของ catalase จากแบคทีเรียภายในเซลล์ใน Onchocerca volvulus1หมายเหตุ: ข้อมูลลำดับนิวคลีโอไทด์ที่รายงานในบทความนี้มีอยู่ใน EMBL , ฐานข้อมูล GenBank และ DDJB ภายใต้หมายเลขภาคยานุวัติ X82176, AF069070 และ AF069069.1” ปรสิตวิทยาระดับโมเลกุลและชีวเคมีฉบับที่ 96 หมายเลข 1-2, pp. 69–81, 1998. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  36. M. Sironi, C. Bandi, L. Sacchi, B. D. Sacco, G. Damiani และ C. Genchi, “หลักฐานระดับโมเลกุลสำหรับญาติสนิทของสัตว์ขาปล้อง endosymbiont Wolbachia ในไส้เดือนฝอย” ปรสิตวิทยาระดับโมเลกุลและชีวเคมีฉบับที่ 74 หมายเลข 2, pp. 223–227, 1995. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  37. M. J. Taylor, K. Bilo, H. F. Cross, J. P. Archer และ A. P. Underwood, “168 rDNA phylogeny และ ultrastructural characterization of Wolbachia intracellular bacteria of filarial nematodes Brugia malayi, B. pahangi, and Wuchereria bancrofti” ปรสิตวิทยาทดลองเน้นฉบับที่ 91 ไม่ใช่ 4, pp. 356–361, 1999. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  38. N. Lo, M. Casiraghi, E. Salati, C. Bazzocchi และ C. Bandi, “มี Wolbachia Supergroups กี่กลุ่ม?” อณูชีววิทยาและวิวัฒนาการฉบับที่ 19 ไม่ 3, pp. 341–346, 2002. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  39. J. M. Sakamoto, J. Feinstein และ J. L. Rasgon, “การติดเชื้อ Wolbachia ใน Cimicidae: ตัวอย่างพิพิธภัณฑ์เป็นทรัพยากรที่ไม่ได้ใช้สำหรับการสำรวจเอนโดซิมบิออน” จุลชีววิทยาประยุกต์และสิ่งแวดล้อมฉบับที่ 72 ไม่ 5, pp. 3161–3167, 2006. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  40. บี.ซี. แคมป์เบลล์, ที. เอส. แบรกก์ และซี.อี.Turner, “วิวัฒนาการของแบคทีเรียทางชีวภาพของมอด 4 สายพันธุ์ (coleoptera: curculionidae) ตามการวิเคราะห์ DNA ไรโบโซม 16S” ชีวเคมีของแมลงและอณูชีววิทยาฉบับที่ 22 ไม่ 5, pp. 415–421, 1992. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  41. TTM Vandekerckhove, S. Watteyne, A. Willems, JG Swings, J. Mertens และ M. Gillis, “การวิเคราะห์สายวิวัฒนาการของ 16S rDNA ของแบคทีเรีย cytoplasmic Wolbachia จากโฮสต์นวนิยาย Folsomia Candida (Hexapoda, Collembola) และความหมายสำหรับ อนุกรมวิธาน wolbachial” จดหมายจุลชีววิทยา FEMSฉบับที่ 180 ไม่ 2, pp. 279–286, 1999. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  42. A. B. Czarnetzki และ C. C. Tebbe, “การตรวจจับและการวิเคราะห์สายวิวัฒนาการของ Wolbachia in Collembola” จุลชีววิทยาสิ่งแวดล้อมฉบับที่ 6 ไม่ 1, pp. 35–44, 2004. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  43. Z. วัง, X.-M. ซู เจ เหวิน L.-Y. Jiang และ G.-X. เฉียว “การติดเชื้ออย่างกว้างขวางและรูปแบบการติดเชื้อที่หลากหลายของ Wolbachia ในเพลี้ยจีน” วิทยาศาสตร์แมลงฉบับที่ 21 ไม่ 3, pp. 313–325, 2014. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  44. เอ.ซี. ดาร์บี้, N.-H. โช, เอช.-เอช. Fuxelius, J. Westberg และ S. G. E. Andersson, “เชื้อโรคภายในเซลล์สุดขั้ว: วิวัฒนาการของจีโนมใน Rickettsiales” แนวโน้มในพันธุศาสตร์ฉบับที่ 23 ไม่ 10, pp. 511–520, 2007. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  45. P. T. Le, P. Pontarotti และ D. Raoult, “สายพันธุ์ Alphaproteobacteria เป็นแหล่งและเป้าหมายของการถ่ายโอนลำดับด้านข้าง” แนวโน้มทางจุลชีววิทยาฉบับที่ 22 ไม่ 3, pp. 147–156, 2014. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  46. A. Saridaki และ K. Bourtzis “Wolbachia: เป็นมากกว่าแมลงในอวัยวะเพศของแมลง” ความคิดเห็นปัจจุบันทางจุลชีววิทยาฉบับที่ 13 ไม่ 1, pp. 67–72, 2010. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  47. O. Duron และ G. D. D. Hurst, “สัตว์ขาปล้องและแบคทีเรียที่สืบทอด: จากการนับ symbionts ไปจนถึงการทำความเข้าใจว่า symbionts นับได้อย่างไร” ชีววิทยา BMCฉบับที่ 11 บทความที่ 45, 2556. ดูที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  48. N. A. Moran, “การติดตามวิวัฒนาการของการสูญเสียยีนใน symbionts ของแบคทีเรีย” ความคิดเห็นปัจจุบันทางจุลชีววิทยาฉบับที่ 6 ไม่ 5, pp. 512–518, 2003. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  49. S. Leclercq, J. Thézé, M. A. Chebbi et al., “การเกิดของโครโมโซมเพศ W โดยการถ่ายโอนในแนวนอนของ Wolbachia แบคทีเรีย symbiont จีโนม” การดำเนินการของ National Academy of Sciences แห่งสหรัฐอเมริกาฉบับที่ 113 หมายเลข 52, pp. 15036–15041, 2016. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  50. N. Ishmael, J. C. D. Hotopp, P. Loanidis et al., “ความหลากหลายทางพันธุกรรมที่กว้างขวางของสายพันธุ์ wolbachia ที่เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิด” จุลชีววิทยาฉบับที่ 155 ไม่ใช่ 7, pp. 2211–2222, 2009. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  51. J. H. Werren, L. Baldo และ M. E. Clark, “Wolbachia: ผู้ควบคุมหลักของชีววิทยาที่ไม่มีกระดูกสันหลัง” รีวิวธรรมชาติ จุลชีววิทยาฉบับที่ 6 ไม่ 10, pp. 741–751, 2008. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  52. D. Kageyama, G. Nishimura, S. Hoshizaki และ Y. Ishikawa, “Feminizing Wolbachia in an insect, Ostrinia furnacalis (Lepidoptera: Crambidae)” กรรมพันธุ์ฉบับที่ 88 หมายเลข 6, pp. 444–449, 2002. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  53. T. T. M. Vandekerckhove, S. Watteyne, W. Bonne et al., “แนวโน้มวิวัฒนาการในการเป็นผู้หญิงและเพศตรงข้ามใน woodlice (Crustacea, Isopoda) ที่ติดเชื้อ Wolbachia pipientis (α-โปรตีโอแบคทีเรีย)” วารสารสัตววิทยาเบลเยียมฉบับที่ 133 หมายเลข 1, pp. 61–69, 2003. ดูที่: Google Scholar
  54. S. Charlat, G. D. D. Hurst และ H. Merçot, “ผลกระทบเชิงวิวัฒนาการของการติดเชื้อ Wolbachia” แนวโน้มในพันธุศาสตร์ฉบับที่ 19 ไม่ 4, pp. 217–223, 2003. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  55. J. H. Yen และ A. R. Barr, “สมมติฐานใหม่ของสาเหตุของความไม่ลงรอยกันของไซโตพลาสซึมใน Culex pipiens L. [31]” ธรรมชาติฉบับที่ 232 หมายเลข 5313, pp. 657-658, 1971. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  56. G. D. D. Hurst, F. M. Jiggins และ A. Pomiankowski, “วิธีใดในการจัดการการขยายพันธุ์ของโฮสต์? Wolbachia ที่ทำให้เกิดความไม่ลงรอยกันของ cytoplasmic นั้นถูกรุกรานอย่างง่ายดายโดยการกลายพันธุ์ที่บิดเบือนอัตราส่วนทางเพศ” นักธรรมชาติวิทยาชาวอเมริกันฉบับที่ 160, ไม่ 3, หน้า 360–373, 2002. ดูได้ที่: Google Scholar
  57. เจ. เอ. รัสเซลล์, “มด (Hymenoptera: Formicidae) เป็นโฮสต์ที่มีลักษณะเฉพาะและลึกลับของสัญลักษณ์ Wolbachia (Alphaproteobacteria) ที่แพร่หลาย” Myrmecological ข่าวฉบับที่ 16, pp. 7–23, 2012. ดูที่: Google Scholar
  58. R. E. Harbach, “The Culicidae (Diptera): การทบทวนอนุกรมวิธาน การจำแนกประเภท และสายวิวัฒนาการ” Zootaxa, ไม่. 1668, pp. 591–638, 2007. ดูได้ที่: Google Scholar
  59. จี.ดี. ดูวัลเล็ต, “ด. (1958-. . . . ). Fontenille และ V. (1956-. . . . ) โรเบิร์ต” Entomologie médicale et vétérinaire, 2017. ดูได้ที่: Google Scholar
  60. พี. ไรเตอร์ “การเปลี่ยนแปลงของสภาพอากาศและโรคที่มียุงเป็นพาหะ” มุมมองด้านสุขภาพสิ่งแวดล้อมฉบับที่ 109 เลขที่ 1, pp. 141–161, 2001. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  61. I. Iturbe-Ormaetxe, T. Walker และ S. L. O' Neill, “Wolbachia และการควบคุมทางชีวภาพของโรคที่มียุงเป็นพาหะ” รายงาน EMBOฉบับที่ 12 ไม่ 6, pp. 508–518, 2011. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  62. J. H. Yen, “การแพร่ผ่านของเชื้อจุลินทรีย์คล้ายริกเกตเซียในยุง” พงศาวดารของ New York Academy of Sciencesฉบับที่ 266 เลขที่ 1, pp. 152–161, 1975. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  63. I. Ricci, G. Cancrini, S. Gabrielli, S. D'Amelio และ G. Favia, “การค้นหา Wolbachia (Rickettsiales: Rickettsiaceae) ในยุง (Diptera: Culicidae): การสำรวจปฏิกิริยาลูกโซ่โพลีเมอเรสขนาดใหญ่และการระบุใหม่” วารสารกีฏวิทยาการแพทย์ฉบับที่ 39 ไม่มี 4, pp. 562–567, 2002. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  64. K. Bourtzis, S. L. Dobson, Z. Xi et al., "การควบคุม symbiosis ยุง - Wolbachia สำหรับการควบคุมเวกเตอร์และโรค" Acta Tropicaฉบับที่ 132 หมายเลข 1, pp. S150–S163, 2014. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  65. F. Baldini, N. Segata, J. Pompon et al., “หลักฐานของการติดเชื้อ Wolbachia ธรรมชาติในประชากรภาคสนามของ Anopheles gambiae” การสื่อสารธรรมชาติฉบับที่ 5 บทความที่ 3985, 2014. ดูที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  66. D. Ayala, O. Akone-Ella, N. Rahola et al., “การติดเชื้อ Wolbachia ตามธรรมชาติพบได้บ่อยในพาหะนำโรคมาลาเรียที่สำคัญในแอฟริกากลาง” bioRxiv, รหัสบทความ 343715, 2018. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  67. C. L. Jeffries, G. G. Lawrence, G. Golovko et al., “นวนิยาย Wolbachia สายพันธุ์ในยุงก้นปล่องพาหะนำโรคมาลาเรียจาก Sub-Saharan Africa” bioRxiv, รหัสบทความ 338434, 2018. ดูที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  68. E. H. Niang, H. Bassene, P. Makoundou, F. Fenollar, M. Weill และ O. Mediannikov, “รายงานครั้งแรกของการติดเชื้อ wolbachia ตามธรรมชาติใน anopheles funestus ของประชากรในเซเนกัล” วารสารมาลาเรียฉบับที่ 17 ไม่ 1, น. 408, 2018. ดูที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  69. L. A. Moreira, I. Iturbe-Ormaetxe, J. A. Jeffery et al., “สัญลักษณ์ Wolbachia ใน ยุงลาย จำกัดการติดเชื้อไข้เลือดออก ชิคุนกุนยา และพลาสโมเดียม” เซลล์ฉบับที่ 139 เลขที่ 7, pp. 1268–1278, 2009. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  70. H. L. C. Dutra, M. N. Rocha, F. B. S. Dias, S. B. Mansur, E. P. Caragata และ L. A. Moreira, “Wolbachia บล็อกการแพร่ระบาดไวรัสซิกาที่แยกได้ในปัจจุบันในบราซิล Aedes aegypti Mosquitoes” โฮสต์เซลล์ & Microbeฉบับที่ 19 ไม่ 6, pp. 771–774, 2016. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  71. F. Zélé, A. Nicot, O. Duron และ A. Rivero, “การติดเชื้อ Wolbachia ปกป้องยุงจากการตายที่เกิดจากพลาสโมเดียมในระบบธรรมชาติ” วารสารชีววิทยาวิวัฒนาการฉบับที่ 25 ไม่ 7, pp. 1243–1252, 2012. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  72. Z. Kambris, A. M. Blagborough, S. B. Pinto et al., "Wolbachia ช่วยกระตุ้นการแสดงออกของยีนภูมิคุ้มกันและยับยั้งการพัฒนาพลาสโมเดียมใน anopheles gambiae" PLoS เชื้อโรคฉบับที่ 6 ไม่ 10, 2010. ดูได้ที่: Google Scholar
  73. G. L. Hughes, R. Koga, P. Xue, T. Fukatsu, J. L. Rasgon และ D. S. Schneider, “Wolbachia Infections Are Virulent and Inhibit Human Malaria Parasite Plasmodium Falciparum in Anopheles Gambiae” PLoS เชื้อโรคฉบับที่ 7 ไม่ใช่ 5, น. e1002043, 2011. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  74. G. Bian, D. Joshi, Y. Dong et al., "Wolbachia บุกรุก Anopheles stephensi ประชากรและก่อให้เกิดการหักเหของการติดเชื้อ Plasmodium" ศาสตร์ฉบับที่ 340 หมายเลข 6133, pp. 748–751, 2013. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  75. M. E. Sinka, M. J. Bangs, S. Manguin et al., “พาหะของยุงก้นปล่องที่เป็นพาหะนำโรคมาลาเรียของมนุษย์ในแอฟริกา ยุโรป และตะวันออกกลาง: ข้อมูลการเกิด แผนที่การกระจาย และการตรวจทางชีวเคมี” Parasites & Vectorsฉบับที่ 3 ไม่ 1, บทความ 117, 2010. ดูได้ที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  76. M. E. Sinka, M. J. Bangs, S. Manguin et al., “แผนที่โลกของพาหะนำโรคมาลาเรียที่โดดเด่น” Parasites & Vectorsฉบับที่ 5 ไม่ 1, 2012. ดูได้ที่: Google Scholar
  77. L.J. Bruce-Chwatt, “การวิจัยและกำจัดโรคมาลาเรียในสหภาพโซเวียต ทบทวนความสำเร็จของสหภาพโซเวียตในด้านมาเลเรียวิทยา” แถลงการณ์องค์การอนามัยโลกฉบับที่ 21, หน้า 737–772, 1959. ดูได้ที่: Google Scholar
  78. L. Molineaux และ G. Gramiccia, โครงการ Garki: การวิจัยด้านระบาดวิทยาและการควบคุมโรคมาลาเรียในสะวันนาซูดานแห่งแอฟริกาตะวันตก, 1980.
  79. J. C. Beier, J. Keating, J. I. Githure, M. B. Macdonald, D. E. Impoinvil และ R. J. Novak, “การจัดการเวกเตอร์แบบบูรณาการสำหรับการควบคุมมาลาเรีย” วารสารมาลาเรียฉบับที่ 7 ไม่ใช่ เสริม 1, น. S4, 2008. ดูได้ที่: ไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  80. G. Benelli และ H. Mehlhorn, “มาลาเรียที่ลดลง, การเพิ่มขึ้นของไข้เลือดออกและไวรัสซิกา: ข้อมูลเชิงลึกสำหรับการควบคุมพาหะนำโรคจากยุง” การวิจัยปรสิตวิทยาฉบับที่ 115 เลขที่ 5, pp. 1747–1754, 2016. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  81. A. Rivero, J. Vézilier, M. Weill, A. F. Read, S. Gandon และ M. Manchester, “การควบคุมสารกำจัดแมลงในโรคที่เกิดจากเวกเตอร์: เมื่อการดื้อยาฆ่าแมลงเป็นปัญหาหรือไม่” PLoS เชื้อโรคฉบับที่ 6 ไม่ 8, น. e1001000, 2010. ดูที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  82. R. V. Durvasula, A. Gumbs, A. Panackal et al., “การป้องกันโรคที่มีแมลงเป็นพาหะ: แนวทางการใช้แบคทีเรียดัดแปลงพันธุกรรม” การดำเนินการของ National Academy of Sciences แห่งสหรัฐอเมริกาฉบับที่ 94 หมายเลข 7, pp. 3274–3278, 1997. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  83. F. M. Gomes, B. L. Hixson, M. D. W. Tyner et al., “ผลของ Wolbachia ที่เกิดขึ้นตามธรรมชาติใน Anopheles gambiae s.l. ยุงจากมาลีที่แพร่เชื้อ Plasmodium falciparum malaria” การดำเนินการของ National Academy of Sciences แห่งสหรัฐอเมริกาฉบับที่ 114 หมายเลข 47, pp. 12566–12571, 2017. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  84. K.N. Johnson, “ผลกระทบของ Wolbachia ต่อการติดเชื้อไวรัสในยุง” ไวรัสฉบับที่ 7 ไม่ใช่ 11, pp. 5705–5717, 2015. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  85. C. J. McMeniman, R. V. Lane, B. N. Cass et al., “การแนะนำอย่างเสถียรของการติดเชื้อ Wolbachia ที่ทำให้ชีวิตสั้นลงสู่ยุง Aedes aegypti” ศาสตร์ฉบับที่ 323 ไม่ 5910, pp. 141–144, 2009. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  86. A. A. Hoffmann, B. L. Montgomery, J. Popovici et al., “การจัดตั้ง Wolbachia ในประชากร Aedes ที่ประสบความสำเร็จในการปราบปรามการแพร่เชื้อไข้เลือดออก” ธรรมชาติฉบับที่ 476 หมายเลข 7361, pp. 454–459, 2011. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  87. F. M. Jiggins, “การแพร่กระจายของ Wolbachia ผ่านประชากรยุง” PLoS ชีววิทยาฉบับที่ 15 ไม่ 6 หน้า e2002780, 2017. ดูได้ที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  88. T. L. Schmidt, I. Filipovic, A. A. Hoffmann, G. Raic, I. Filipović, and G. Rašić, “จีโนมภูมิทัศน์ระดับดีของ Aedes aegypti เผยให้เห็นการสูญเสียของ Wolbachia transinfection, อุปสรรคการแพร่กระจายและศักยภาพสำหรับการเคลื่อนไหวทางไกลเป็นครั้งคราว” BioRxiv, 2017. ดูได้ที่: เว็บไซต์ผู้จัดพิมพ์ | Google Scholar
  89. G. Terradas และ E.A. McGraw, “ไวรัสที่เป็นสื่อกลาง Wolbachia ปิดกั้นในยุงพาหะนำโรค Aedes aegypti” ความคิดเห็นปัจจุบันในวิทยาศาสตร์แมลงฉบับที่ 22, pp. 37–44, 2017. ดูได้ที่: Publisher Site | Google Scholar
  90. S. Asad, R. Parry และ S. Asgari, “การควบคุมของ Aedes aegypti Vago1 โดย Wolbachia และผลกระทบต่อการจำลองแบบของไวรัสไข้เลือดออก” ชีวเคมีของแมลงและอณูชีววิทยาฉบับที่ 92, pp. 45–52, 2018. ดูที่: Publisher Site | Google Scholar
  91. ใคร, รายงานโรคมาลาเรียโลก ประจำปี 2560, เจนีวา, สวิตเซอร์แลนด์, 2017.
  92. ใคร, แผนสากลสำหรับการจัดการการดื้อยาฆ่าแมลงในพาหะนำโรคมาลาเรียองค์การอนามัยโลก พ.ศ. 2555
  93. F. Zélé, A. Nicot, A. Berthomieu, M. Weill, O. Duron และ A. Rivero, “Wolbachia เพิ่มความไวต่อการติดเชื้อ Plasmodium ในระบบธรรมชาติ” การดำเนินการของ Royal Society B Biological Scienceฉบับที่ 281 ไม่ใช่ พ.ศ. 2322 ดูที่: Google Scholar

ลิขสิทธิ์

ลิขสิทธิ์ © 2018 El Hadji Amadou Niang et al. นี่เป็นบทความการเข้าถึงแบบเปิดที่เผยแพร่ภายใต้ Creative Commons Attribution License ซึ่งอนุญาตให้ใช้ แจกจ่าย และทำซ้ำได้ไม่จำกัดในสื่อใดๆ โดยมีการอ้างถึงงานต้นฉบับอย่างเหมาะสม


สื่ออิเล็กทรอนิกส์เสริมสามารถดูได้ทางออนไลน์ที่ https://doi.org/10.6084/m9.figshare.c.3972816

จัดพิมพ์โดยราชสมาคม สงวนลิขสิทธิ์.

อ้างอิง

. 2013 ความรู้เบื้องต้นเกี่ยวกับสรีรวิทยาของการได้ยิน , 4th edn. ลอนดอน สหราชอาณาจักร : สำนักพิมพ์วิชาการ. Google Scholar

. 2012 จิตวิทยาการได้ยินเบื้องต้น , 6th เอ็ด. บิงลีย์ สหราชอาณาจักร : Emerald Group Publishing Limited . Google Scholar

. พ.ศ. 2524 การปราบปรามเซลล์ประสาทหูที่ระบุในสมองของคริกเก็ตแบบทูโทน Gryllus bimaculatus (เดอ เกียร์). เจ คอมพ์ ฟิสิออล สารนิวโรเอทอล Sens. พฤติกรรมประสาท. ฟิสิออล 144, 117–125. (ดอย:10.1007/BF00612805) Crossref, Google Scholar

. พ.ศ. 2529 ความสับสนของโฟโนแทกซิสโดยการปิดบังเสียงในพุ่มไม้คริกเก็ต Conocephalus brevipennis (Tettigoniidae: Conocephalinae). จริยธรรม 73, 19–28. (ดอย:10.1111/j.1439-0310.1986.tb00996.x) Crossref, Google Scholar

. พ.ศ. 2529 โฟโนแทกซิสในการบินจิ้งหรีด ครั้งที่สอง กลไกทางสรีรวิทยาของการปราบปรามทูโทนของพฤติกรรมการหลีกเลี่ยงความถี่สูงโดยเสียงเพลงที่เรียก เจ คอมพ์ ฟิสิออล สารนิวโรเอทอล Sens. พฤติกรรมประสาท. ฟิสิออล 159, 441–456. (ดอย:10.1007/BF00604164) Crossref, Google Scholar

. 2002 การปราบปรามทูโทนในคริกเก็ต ยูเนโมบิอุส คาโรลินุส (Gryllidae, Nemobiinae). เจ. อะคูสติก. ซ. เป็น. 111, 1475–1485. (ดอย:10.1121/1.1451069) Crossref, PubMed, Google Scholar

. 2015 กลไกประสาทสำหรับการตรวจจับสัญญาณเสียงภายใต้หน้ากากที่แข็งแกร่งในแมลง เจ. ประสาทวิทยา. 35, 10 562–10 571. (ดอย:10.1523/JNEUROSCI.0913-15.2015) Crossref, Google Scholar

. 2552 เอฟเฟกต์ลำดับความสำคัญแก้ไขภาพลวงตาของแหล่งกำเนิดเสียงผีในแมลงวันปรสิต Ormia ochracea . Proc. นัท แอ๊ด. วิทย์ สหรัฐอเมริกา 106, 6357–6362. (ดอย:10.1073/pnas.0809886106) Crossref, PubMed, Google Scholar

Simões PM, Ingham RA, Gibson G, Russell IJ

. พ.ศ. 2559 บทบาทการบิดเบือนของเสียงในพฤติกรรมการปรับความถี่อย่างรวดเร็วแบบใหม่ในยุงตัวผู้ที่บินได้อิสระ เจ. เอ็กซ์พี. ไบโอล. 219, 2039–2047. (ดอย: 10.1242/jeb.135293) Crossref, PubMed, Google Scholar

Simões PMV, Gibson G, รัสเซล ไอเจ

. 2017 พฤติกรรมอะคูสติก Pre-copula ของผู้ชายในยุงมาเลเรีย ยุงก้นปล่อง coluzzii และ ยุงก้นปล่อง gambiae s.s. ไม่มีส่วนช่วยในการแยกการสืบพันธุ์ เจ. เอ็กซ์พี. ไบโอล. 220, 379–385. (ดอย: 10.1242/jeb.149757) Crossref, PubMed, Google Scholar

วอร์เรน บี, กิ๊บสัน จี, รัสเซลล์ ไอเจ

. พ.ศ. 2552 การรู้จำเรื่องเพศผ่านการคู่ผสมพันธุ์กลางเที่ยวบินใน คูเล็กซ์ ยุงเป็นสื่อกลางโดยการบิดเบือนเสียง สกุลเงิน ไบโอล. 19, 485–491. (ดอย:10.1016/j.cub.2009.01.059) Crossref, PubMed, ISI, Google Scholar

. 2012 Mosquito bioacoustics: การประมวลผลการได้ยินใน Culex pipiens pipiens L. เพศผู้ (Diptera, Culicidae) ระหว่างการจำลองการบิน เอนโทมอล รายได้ 92, 605–621. (ดอย:10.1134/S0013873812060024) Crossref, Google Scholar

Pennetier C, Warren B, Dabiré KR, รัสเซล ไอเจ, กิ๊บสัน จี

. 2010 'ร้องเพลงปีก' เป็นกลไกในการจดจำสายพันธุ์ในยุงมาเลเรีย ยุงก้นปล่อง gambiae . สกุลเงิน ไบโอล. 20, 131–136. (ดอย:10.1016/j.cub.2009.11.040) Crossref, PubMed, ISI, Google Scholar

Arthur BJ, Wyttenbach RA, Harrington LC, Hoy RR

. 2010 การตอบสนองของระบบประสาทต่อสิ่งเร้าหนึ่งและสองโทนในอวัยวะการได้ยินของยุงพาหะไข้เลือดออก เจ. เอ็กซ์พี. ไบโอ. 213, 1376–1385. (ดอย:10.1242/jeb.033357) Crossref, PubMed, Google Scholar

Göpfert MC, Briegel H, Robert D

. พ.ศ. 2542 การได้ยินของยุง: การสั่นของเสาอากาศที่เกิดจากเสียงในเพศชายและเพศหญิง ยุงลาย . เจ. เอ็กซ์พี. ไบโอล. 202, 2727–2738. PubMed, ISI, Google Scholar

. พ.ศ. 2544 กลศาสตร์การได้ยินที่กระตือรือร้นในยุง. Proc. อาร์ ซอค ลอนดอน. NS 268, 333–339. (ดอย:10.1098/rspb.2000.1376) ลิงค์, ISI, Google Scholar

. 1999 ชีววิทยาของยุง การรับความรู้สึกและพฤติกรรม , ฉบับ 2. วอลลิงฟอร์ด สหราชอาณาจักร : CAB International Google Scholar

. พ.ศ. 2417 การทดลองเกี่ยวกับเครื่องช่วยฟังที่ควรจะเป็นของ คูเล็กซ์ ยุง. ฟิลอส นิตยสาร 48, 371–385. Google Scholar

. พ.ศ. 2437 Ein bisher wenig beachtetes หนวด sinnesorgan der Insekten: mit besonderer Berücksichtigung der Culiciden und Chironomiden ไซซ์เซอร์ ฉลาด ซูล. 58, 475–528. Google Scholar

. พ.ศ. 2444 ยุงและโน้ตดนตรี จดหมายถึงบรรณาธิการ ใน The Times (ลอนดอน), 28 ตุลาคม, น. 11. Google Scholar

คาห์น เอ็มซี, เซเลสติน ดับเบิลยู, ออฟเฟนเฮาเซอร์ วู

. พ.ศ. 2488 การบันทึกเสียงที่เกิดจากยุงที่เป็นพาหะนำโรคบางชนิด ศาสตร์ 101, 335–336. (ดอย:10.1126/science.101.2622.335) Crossref, PubMed, Google Scholar

. พ.ศ. 2491 การศึกษาพฤติกรรมยุง ห้องปฏิบัติการทดลองศึกษาพฤติกรรมทางเพศของ ยุงลาย (ลินเนียส). เป็น. มิดล. แนท. 40, 265–352. (ดอย:10.2307/2421604) Crossref, ISI, Google Scholar

. พ.ศ. 2502 การบินตอบสนองต่อเสียงต่างๆ โดยผู้ใหญ่ชายของ ยุงลาย (L.) (Diptera: Culicidae). สามารถ. เอนโทมอล 91, 181–191. (ดอย:10.4039/Ent91181-3) Crossref, Google Scholar

. พ.ศ. 2522 พฤติกรรมการผสมพันธุ์ในยุง ยุงก้นปล่อง gambiae s.l. I. ระยะใกล้และพฤติกรรมการติดต่อ ฟิสิออล เอนโทมอล 4, 111–120. (ดอย:10.1111/j.1365-3032.1979.tb00185.x) Crossref, Google Scholar

. พ.ศ. 2537 แรงดึงดูดของยุงตัวผู้ให้มีเสียง แยม. มัสยิด รศ. 10, 297–301. PubMed, ISI, Google Scholar

. พ.ศ. 2449 การรวมกลุ่มของ Culex pipiens . จิตใจ: A J. Entomol. 13, 123–133. (ดอย:10.1155/1906/48457) Crossref, Google Scholar

. พ.ศ. 2528 พฤติกรรมการจับกลุ่มของยุง Culex pipiens quinquefasciatus: การวิเคราะห์เชิงปริมาณ ฟิสิออล เอนโทมอล 10, 283–296. (ดอย:10.1111/j.1365-3032.1985.tb00049.x) Crossref, Google Scholar

. 1998 Biometry: หลักการและการปฏิบัติของสถิติในการวิจัยทางชีววิทยา . นิวยอร์ก : นิวยอร์ก : ดับเบิลยู เอช ฟรีแมน แอนด์ คอมปะนี . Google Scholar

. 2014 คู่มือสถิติชีวภาพ , ฉบับที่ 3 บัลติมอร์ แมสซาชูเซตส์: Sparky House Publishing Google Scholar

Warren B, Lukaskin AN, รัสเซล ไอเจ

. 2010 มอเตอร์ dynein-tubulin กระตุ้นการสั่นและการขยายสัญญาณในอวัยวะการได้ยินของยุง Proc. อาร์ ซอค NS 277, 1761–1769. (ดอย:10.1098/rspb.2009.2355) ลิงค์, ISI, Google Scholar

Samarra FI, Klappert K, Brumm H, Miller PJ

. 2552 อุปสรรคด้านเสียงในการสื่อสาร: การปิดบังเสียงของเพลงเกี้ยวพาราสีในแมลงวันผลไม้ แมลงหวี่ montana . พฤติกรรม 146, 1635–1648. (ดอย:10.1163/156853909X463713) Crossref, Google Scholar

. 2006 Flying in tune: การจดจำเรื่องเพศในยุง. สกุลเงิน ไบโอล. 16, 1311–1316. (ดอย:10.1016/j.cub.2006.05.053) Crossref, PubMed, ISI, Google Scholar

Cator LJ, Arthur BJ, Harrington LC, Hoy RR

. พ.ศ. 2552 การบรรจบกันของเพลงรักของยุงพาหะไข้เลือดออก ศาสตร์ 323, 1077–1079. (ดอย:10.1126/science.1166541) Crossref, PubMed, ISI, Google Scholar

. พ.ศ. 2522 การปราบปรามแบบทูโทนในเซลล์ขนของประสาทหู ได้ยิน. ความละเอียด 1, 227–236. (ดอย:10.1016/0378-5955(79)90016-9) Crossref, Google Scholar

. พ.ศ. 2525 ปฏิสัมพันธ์แบบทูโทนในไมโครโฟนิกของประสาทหู ได้ยิน. ความละเอียด 8, 29–48. (ดอย:10.1016/0378-5955(82)90032-6) Crossref, PubMed, Google Scholar


กิตติกรรมประกาศ

เราขอขอบคุณ T. Chiodo สำหรับความช่วยเหลือในห้องปฏิบัติการและการประมวลผลตัวอย่างบางส่วนที่ใช้ในการศึกษานี้ เราขอขอบคุณ J. Baltzegar และ F. Gould สำหรับความคิดเห็นเกี่ยวกับต้นฉบับเวอร์ชันก่อนหน้า เจสสิก้า ธอมป์สันและโรเดอริค แมคอินทอชให้ข้อมูลเชิงลึกเกี่ยวกับภูมิอากาศแบบไพลสโตซีนของแอฟริกา เงินทุนสำหรับชิป SNP ที่ใช้ในการศึกษานี้มาจากรางวัล NIH RO1 AI101112 JS ได้รับทุนบางส่วนใน NSF DEB #1754376 และ AG-S โดย Grant or Cooperative Agreement Number U01CK000509 ซึ่งได้รับทุนจากศูนย์ควบคุมและป้องกันโรค เนื้อหาสิ่งพิมพ์เป็นความรับผิดชอบของผู้เขียนแต่เพียงผู้เดียว และไม่จำเป็นต้องแสดงถึงความคิดเห็นอย่างเป็นทางการของศูนย์ควบคุมและป้องกันโรคหรือกรมอนามัยและบริการมนุษย์


ความคิดที่ดีที่สุดคือการเพิกเฉยต่อสิ่งที่ทุกคนพูด และทดสอบด้วยตัวเอง ติดตั้งแอพอย่าง "SpectralPro Analyzer" และสร้างเสียงความถี่สูงโดยใช้โปรแกรม PC (ง่าย) หรือดาวน์โหลด MP3 ความถี่สูงจากเว็บไซต์

ฉันได้ทำสิ่งที่กล่าวมาทั้งหมดบนโทรศัพท์หลายรุ่นแล้ว - ฉันพบว่าฉันได้ผลลัพธ์ที่ยอดเยี่ยมเมื่ออยู่ไกลจากช่วงการได้ยินของฉัน อย่างน้อยก็สูงถึง 21kHz (ขีดจำกัดสำหรับแอปเหล่านั้น) สิ่งที่น่าสนใจเกี่ยวกับเรื่องนี้คือ
ก) ทุกคนที่บอกว่าลำโพง PC ทำไม่ได้ 21kHz ผิดและ
b) ทุกคนที่กล่าวว่าไมโครโฟนของสมาร์ทโฟนไม่สามารถรับความถี่สูงได้ก็ผิดเช่นกัน

บรรทัดล่าง - เกือบทุกคนที่ไม่เคยลองสิ่งนี้จะเดาได้ ความตั้งใจที่ดีไม่ได้ทำให้การคาดเดาเกี่ยวข้องกัน :-(

ขอให้โชคดีกับโครงการของคุณ!

นี่คือ Samsung Galaxy Note-1 ที่บันทึกสัญญาณ Macbook Pro ซึ่งเปลี่ยนจาก 9kHz เป็น 21kHz:

ซึ่งมีแนวโน้มว่าจะแตกต่างกันไปสำหรับผู้ผลิต/รุ่นแต่ละราย และบางสิ่งที่คุณจะต้องทดสอบด้วยตัวเองหรือค้นหาข้อกำหนดของผู้ผลิตและ/หรือการทดสอบที่บริษัทอื่นทำ ตัวอย่างเช่น นี่คือการเปรียบเทียบการตอบสนองความถี่ไมโครโฟนของ iPhone:

นอกจากนี้ โปรดทราบด้วยว่าหลายคน โดยเฉพาะเด็กที่ได้ยินถึง 20 kHz และบางครั้งก็เกิน ดังนั้นสิ่งที่คุณพยายามจะบรรลุจึงอาจไม่สามารถทำได้ในโทรศัพท์ส่วนใหญ่

เห็นได้ชัดว่าเป็นไปได้ที่ไมโครโฟนของสมาร์ทโฟนจะรับเสียงที่คนส่วนใหญ่ไม่ได้ยิน เนื่องจาก:

"ซอฟต์แวร์ Zoosh ของ Narrate ใช้ประโยชน์จากลำโพงและไมโครโฟนของสมาร์ทโฟนเพื่อเปิดใช้งานการสื่อสารข้อมูลแบบเดียวกันระหว่างอุปกรณ์ที่ NFC ในปัจจุบันมีให้ แต่มีความถี่อัลตราโซนิกที่มนุษย์ไม่ได้ยิน" -- รายสัปดาห์ สแลชดอท

ขึ้นอยู่กับโทรศัพท์ทั้งหมด พวกเขาทั้งหมดจะใช้ไมโครโฟน/วงจรที่แตกต่างกัน
โดยทั่วไป ไมโครโฟนเสียงจะอยู่ในช่วง 20Hz - 20kHz ไมโครโฟนราคาถูกจำนวนมาก (หรือมีไว้สำหรับเสียงเท่านั้น) จะมีความถี่ตัดที่ต่ำกว่า 15kHz หรือน้อยกว่า วงจรที่ต่อกับไมโครโฟนอาจจงใจลดความถี่ - ใช้เทคนิค DSP ต่างๆ เพื่อลดเสียงรบกวนและผลสะท้อนกลับ ปรับการบีบอัด ฯลฯ ดังนั้นการประมวลผลซอฟต์แวร์จึงค่อนข้างซับซ้อนและเป็นไดนามิกในโทรศัพท์มือถือสมัยใหม่

คุณควรจะสามารถพึ่งพาได้อย่างน้อย 100Hz - 10kHz

สำหรับรุ่นใดรุ่นหนึ่ง ให้ดูข้อมูลจำเพาะ อย่างน้อยควรให้รายละเอียดพื้นฐานบางประการเกี่ยวกับช่วงอินพุตของไมโครโฟน หรือทำการทดสอบด้วยตัวสร้างฟังก์ชันและแอพบันทึกบนโทรศัพท์

ในฐานะผู้ใช้ iPhone ครั้งแรก (และนักบันทึก BBC ที่ผ่านการฝึกอบรมมาแล้ว) ฉันรู้สึกประทับใจกับเสียงมาก แอพวิเคราะห์สเปกตรัม (Octave RTA) ลงทะเบียนลงไปที่ 16 Hz และสูงสุด 20 kHz บน iPhone 7 ของฉัน 7 คอนเสิร์ตสดออร์แกนได้รับการบันทึกเป็นอย่างดีเหยียบและทั้งหมดแม้ว่าจะเป็นแบบโมโน การรั่วไหลของเสียงนำร่อง 19kHz จากลำโพงวิทยุ FM นั้นมองเห็นได้ชัดเจน
ฉันไม่มีทางยืนยันความเรียบของการตอบสนอง แม้ว่าแหล่งกำเนิดสัญญาณรบกวนสีขาวตามธรรมชาติ เช่น น้ำตก จะแสดงโดยไม่มีจุดยอดหรือแถบคลื่นที่ชัดเจน การบันทึกคำพูดควบคู่ไปกับไมโครโฟนคอนเดนเซอร์สำหรับสตูดิโอที่ดี แทบไม่มีความแตกต่างกันมากนัก แค่แสงเบสเล็กน้อยและเสียงแหลมกลางที่สว่าง และ EQ ได้อย่างง่ายดาย หวังว่า Apple จะไม่เปลี่ยนไมโครโฟนหรืออินพุต หรือบางทีพวกเขาทำในภายหลัง?

วิธีที่ดีที่สุดในการบอกคือค้นหาไมโครโฟน MEMS ที่อยู่ในโทรศัพท์ของคุณและค้นหาแผ่นข้อมูล

การทดสอบด้วยตัวเองโดยไม่ต้องใช้อุปกรณ์คุณภาพในห้องปฏิบัติการจะมีปัญหามากมาย ได้แก่:

1) โพสต์อื่น ๆ ได้แนะนำเพียงแค่เล่นการกวาดความถี่บนลำโพงของคุณ ปัญหาที่นี่คือลำโพงของคุณ (ที่มีเปลือกหุ้ม) มีการตอบสนองความถี่ที่ไม่ราบเรียบ ดังนั้น คุณกำลังแนะนำการกวาดความถี่ที่เปลี่ยนแล้วโดยการตอบสนองความถี่ของระบบไดนามิกของลำโพง

2) คุณไม่มีไมโครโฟนคุณภาพห้องปฏิบัติการอ้างอิงที่มีการตอบสนองความถี่แบบแบนเพื่อชดเชย 1

3) ความจริงที่ว่าไมโครโฟนถูกปิดไว้ในเคสโทรศัพท์มือถือของคุณจะเปลี่ยนการตอบสนองความถี่อันเนื่องมาจากผลกระทบของรูปทรงของไมโครโฟนเข้า ดูบทความเกี่ยวกับเรโซแนนซ์เรโซแนนซ์และการออกแบบเสียงของเฮล์มโฮลทซ์

นอกสภาพแวดล้อมในห้องปฏิบัติการ เป็นเรื่องยากมากที่จะได้รับการตอบสนองความถี่ที่มีความหมาย


ดูวิดีโอ: . กบดกยง จากขวดนำพลาสตก: Rama Square ชวง Better To Know 23 23 (อาจ 2022).